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    GBT 4789.41-2016 腸桿菌科檢驗



    錄入時(shí)間:2016-9-27 14:05:21 來(lái)源:青島海博生物

    1 范圍
    本標準規定了食品中腸桿菌科(Enterobacteriaceae)的檢驗方法。
    本標準第一法適用于腸桿菌科含量較高的食品中腸桿菌科的計數;第二法適用于腸桿菌科含量較低食品中腸桿菌科的計數。
    2 術(shù)語(yǔ)和定義
    2.1
    腸桿菌科 
    在給定條件下發(fā)酵葡萄糖產(chǎn)酸、氧化酶陰性的需氧或兼性厭氧革蘭氏陰性無(wú)芽胞桿菌。
    2.2
    腸桿菌科計數 
    按本標準規定方法,對每克或每毫升檢樣中的腸桿菌科進(jìn)行計數。
    2.3
    最可能數 
    基于泊松分布的一種間接計數方法。
    3 設備和材料
    除微生物實(shí)驗室常規滅菌及培養設備外,其他設備和材料如下:
    3.1 恒溫培養箱:36 ℃±1 ℃。
    3.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。
    3.3 水浴箱:46 ℃±1 ℃。
    3.4 天平:感量0.1g。
    3.5 顯微鏡:10倍~100倍。
    3.6 均質(zhì)器。
    3.7 振蕩器。
    3.8 無(wú)菌吸管:1mL(具0.01mL 刻度)、10mL(具0.1mL 刻度)或微量移液器及吸頭。
    3.9 無(wú)菌錐形瓶或等效容器:容量150mL、500mL。
    3.10 無(wú)菌培養皿:直徑90mm。
    3.11 無(wú)菌試管:18mm×180mm、15mm×150mm。
    3.12。穑 計或pH 比色管或精密pH 試紙。
    4 培養基和試劑
    4.1 緩沖蛋白胨水(BPW):見(jiàn)B.1。
    4.2 緩沖葡萄糖煌綠膽鹽肉湯(EE 肉湯):見(jiàn)B.2。
    4.3 結晶紫中性紅膽鹽葡萄糖瓊脂(VRBGA):見(jiàn)B.3。
    4.4 營(yíng)養瓊脂(NA):見(jiàn)B.4。
    4.5 葡萄糖瓊脂:見(jiàn)B.5。
    4.6 革蘭氏染色液:見(jiàn)B.6。
    4.7 氧化酶試劑:見(jiàn)B.7。
    4.8 無(wú)菌1mol/LNaOH:見(jiàn)B.8。
    4.9 無(wú)菌1mol/L HCl:見(jiàn)B.9。
    第一法 腸桿菌科平板計數法
    5 檢驗程序
    腸桿菌科平板計數法檢驗程序見(jiàn)圖1。


    6 操作步驟
    6.1 樣品的稀釋
    6.1.1 固體和半固體樣品:稱(chēng)。玻担 樣品放入盛有225 mLBPW 的無(wú)菌均質(zhì)杯中,8000r/min~10000r/min均質(zhì)1 min~2min,或放入盛有225 mL BPW 的無(wú)菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1min~2min,制成1∶10的樣品勻液。
    6.1.2 液體樣品:以無(wú)菌吸管吸。玻担恚 樣品放入盛有225mLBPW 的無(wú)菌錐形瓶(瓶?jì)阮A置適當數量的無(wú)菌玻璃珠)中,充分混勻,制成1∶10的樣品勻液。
    6.1.3 用1mL 無(wú)菌吸管或微量移液器吸。薄茫保皹悠穭蛞海保恚,沿管壁緩緩注入盛有9mLBPW 的無(wú)菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不應觸及稀釋液面),振搖試管或換用1支1 mL 無(wú)菌吸管反復吹打,使其混合均勻,制成1∶100的樣品勻液。
    6.1.4 按6.1.3操作程序,依次制成10倍遞增系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋?zhuān)贝,換用1支1mL 無(wú)菌吸管或吸頭。從制備樣品勻液至樣品接種完畢,全過(guò)程不得超過(guò)15min。
    6.2 傾注平板和培養
    6.2.1 根據對樣品污染狀況的估計及相關(guān)限量要求,選擇2個(gè)~3個(gè)適宜的連續稀釋度的樣品勻液(液體樣品可以選擇原液),每個(gè)稀釋度接種2個(gè)無(wú)菌平皿。同時(shí),分別吸。保恚蹋拢校 加入兩個(gè)無(wú)菌平皿內作為空白對照。
    6.2.2 將10mL~15mL 冷卻至46 ℃的VRBGA(可放置于46 ℃±1 ℃恒溫水浴箱中保溫)傾注于每個(gè)平皿中。小心旋轉平皿,使樣品勻液與培養基充分混勻。
    6.2.3 待瓊脂凝固后,傾注一薄層同樣的培養基覆蓋平板表層。防止蔓延生長(cháng)并使菌落特征更為
    明顯。
    6.2.4 待VRBGA 平板上層瓊脂凝固后翻轉平板,36 ℃±1 ℃培養18h~24h。
    6.3 典型菌落計數和確認
    6.3.1 腸桿菌科典型菌落為有或無(wú)沉淀環(huán)的粉紅色至紅色或紫色菌落。選取典型菌落數在15CFU~150CFU 之間、無(wú)蔓延菌落生長(cháng)的平板,只計數典型菌落數。菌落計數以菌落形成單位(CFU)表示。
    6.3.2 其中一個(gè)平板有較大片狀菌落生長(cháng)時(shí),則不宜采用,而應以無(wú)片狀菌落生長(cháng)的平板作為該稀釋
    度的菌落數;若片狀菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均勻,即可計算半個(gè)平板后乘以2,代表一個(gè)平板菌落數。
    6.3.3 當平板上出現菌落間無(wú)明顯界線(xiàn)的鏈狀生長(cháng)時(shí),則將每條單鏈作為一個(gè)菌落計數。
    6.3.4 從每個(gè)平板上至少挑。祩(gè)(小于5個(gè)全選)典型菌落進(jìn)行確認;如果有不同形態(tài)的典型菌落,則每種形態(tài)分別至少挑。眰(gè)菌落進(jìn)行確認。
    6.3.5 典型菌落的確認:
    a) 分別將所挑選的每一個(gè)菌落,劃線(xiàn)于營(yíng)養瓊脂平板,36 ℃±1 ℃培養18h~24h,挑取平板上的菌落進(jìn)行革蘭氏染色鏡檢、氧化酶試驗及葡萄糖發(fā)酵試驗。
    b) 革蘭氏染色鏡檢:腸桿菌科為革蘭氏陰性桿菌,無(wú)芽孢,大小為(0.3~1.0)μm× (1.0~6.0)μm。
    c) 氧化酶試驗:用鉑/銥接種環(huán)或玻璃棒(不要用鎳鉻接種環(huán))挑取單個(gè)菌落涂于浸濕氧化酶試劑的濾紙上,濾紙的顏色在10s內變成藍紫色,判為陽(yáng)性反應。
    d) 葡萄糖發(fā)酵試驗:用接種針挑取少許氧化酶陰性的同一個(gè)菌落,穿刺于葡萄糖瓊脂內,于36 ℃±
    1 ℃培養24h±2h,若試管內的內容物變?yōu)辄S色,判為陽(yáng)性反應。
    6.4 結果的計算
    6.4.1 一般原則
    若有兩個(gè)連續稀釋度的平板典型菌落數在適宜計數范圍內,按式(1)計算,示例見(jiàn)A.1、A.2、A.3、A.4。


     式中:
    N———樣品中腸桿菌科菌落數;
    Σa———確證的腸桿菌科菌落數之和;
    n1 ———第一稀釋度(低稀釋倍數)平板個(gè)數(含確證的腸桿菌科菌落);
    n2 ———第二稀釋度(高稀釋倍數)平板個(gè)數(含確證的腸桿菌科菌落);
    d———稀釋因子(第一稀釋度)。
    其中,a按式(2)計算:


     式中:
    a———確證的腸桿菌科菌落數;
    b———某一平板中犃個(gè)菌落中被確證為腸桿菌科的菌落數,b≤A;
    A———某一平板中用于確認試驗的菌落數;
    C———某一平板中典型菌落總數。
    6.4.2 低菌落數
    若最低稀釋度(包括液體樣品原液)平板的典型菌落數均小于15CFU,具有確證的腸桿菌科菌落,
    則以確證的菌落數乘以最低稀釋倍數計算。
    若最低稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無(wú)菌落生長(cháng),或典型菌落數均小于15CFU,且無(wú)確證的
    腸桿菌科菌落,則以小于1乘以最低稀釋倍數計算。
    6.4.3 特殊情況
    第一稀釋度平板上的典型菌落數均大于150CFU,且有確證的腸桿菌科菌落,以及第二稀釋度平板上無(wú)確證的腸桿菌科菌落或典型菌落數不在15CFU~150CFU 之間,則以確證的菌落數乘以第一稀釋倍數計算,示例見(jiàn)A.5。
    若所有稀釋度的平板上典型菌落數均不在適宜計數范圍內,且無(wú)確證的腸桿菌科菌落,則以小于1乘以最低稀釋倍數計算。
    7 報告
    7.1 菌落數小于100時(shí),以整數報告。
    7.2 菌落數大于或等于100時(shí),對第3位數字進(jìn)行修約后,取前2位數字,后面用0代替位數;也可用10的指數形式來(lái)表示,采用兩位有效數字。
    7.3 數字修約按“四舍五入”原則進(jìn)行。
    7.4 若所有平板上為蔓延菌落而無(wú)法計數,則報告菌落蔓延。
    7.5 若空白對照上有菌落生長(cháng),則此次檢測結果無(wú)效。
    7.6 稱(chēng)重取樣以CFU/g為單位報告,體積取樣以CFU/mL 為單位報告。
    第二法 腸桿菌科犕犘犖計數法
    8 檢驗程序
    腸桿菌科MPN 計數法檢驗程序見(jiàn)圖2。

     

    9 操作步驟
    9.1 樣品的稀釋
    按6.1進(jìn)行。
    9.2 接種和培養
    9.2.1 非選擇性前增菌
    根據對樣品污染狀況的估計及相關(guān)限量要求,選擇3 個(gè)適宜連續稀釋度的樣品勻液,每個(gè)稀釋度3管,共9管BPW 于36 ℃ ±1 ℃培養18h±2h。
    9.2.2 選擇性增菌
    從BPW 各培養管中,分別移。保恚 培養物,接種于10mL 的EE 肉湯中,36℃±1℃培養24h±2h。
    9.2.3 分離
    用接種環(huán)從EE 各肉湯管中分別取培養物1環(huán),劃線(xiàn)接種于VRBGA 平板,36 ℃±1 ℃培養24h±2h,觀(guān)察平板上有無(wú)典型菌落。
    9.3 典型菌落的確認
    典型菌落確認見(jiàn)6.3。
    10 報告
    腸桿菌科為革蘭氏陰性無(wú)芽胞桿菌,發(fā)酵葡萄糖產(chǎn)酸、氧化酶陰性。只要有1個(gè)菌落確認為腸桿菌科,其所代表的EE 管即為腸桿菌科陽(yáng)性,依據EE 陽(yáng)性管數查MPN 表(見(jiàn)附錄C),報告每克(毫升)樣品中腸桿菌科的MPN 值。稱(chēng)重取樣以MPN/g為單位報告,體積取樣以MPN/mL 為單位報告。

    實(shí)驗所需產(chǎn)品一覽表(點(diǎn)擊產(chǎn)品名稱(chēng)即可進(jìn)入產(chǎn)品詳情頁(yè)面

     產(chǎn)品貨號  產(chǎn)品名稱(chēng)  規格(g)   價(jià)格(元)  產(chǎn)品說(shuō)明及用途
     HB0109  營(yíng)養瓊脂(NA)  250g      90            細菌計數、不含糖,可作血瓊脂基礎和傳代用(GB標準)
     HB4084  緩沖蛋白胨水(BPW)  250g  70  用于阪崎桿菌前增菌培養(GB標準)
     HB0126-7  緩沖葡萄糖煌綠膽鹽肉湯(EE肉湯)  250g  250  每支添加于200ml
     HB0176-4  結晶紫中性紅膽鹽葡萄糖肉湯(VRBGA)  250g  105  用于分離小腸結腸炎耶爾森氏菌
     HB0135-2     葡萄糖瓊脂  250g  120  用于小腸結腸炎耶爾森氏菌增菌培養
     HB8278  革蘭氏染色液  5ml*8          40  生化培養基,用于小腸結腸炎耶爾森氏菌的生化反應篩選
     JX3400094       氧化酶試劑  1g  50  生化培養基,用于小腸結腸炎耶爾森氏菌的生化反應篩選


     

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