TSS方法制備感受態(tài)細菌

一、  準備工作

1、  緩沖液1×TSS的配制：

事先配制1M的氯化鎂——20.3g氯化鎂(6分子水結晶)/定容于100ml去離子水后封裝，不用滅菌。

取干凈的100ml 量筒和100ml 燒杯，用量筒量取100ml去離子水，加入至燒杯中，取 1 g 蛋白胨，0.5g酵母抽提物，0.5g氯化鈉，10 g PEG(MW= 3350), 5ml DMSO，5ml 的1 M氯化鎂，溶解后用鹽酸或者氫氧化鈉調整pH為6.5，混勻后用0.22um 濾器過(guò)濾除菌。儲存在4度，保質(zhì)期約6個(gè)月。

2、已劃平板（或者用槍頭沾取并稀釋后涂布）并在培養箱中過(guò)夜培養的菌種——Dh5α，用于接種并振蕩培養。.兩個(gè)錐形瓶，分別裝有30 ml和50mlLB，滅菌后置于4℃冰箱備用。

3、  若干已滅菌的瓊脂平板，一個(gè)未加抗生素，用于第二步的接種。其余做轉化用。

二、  感受態(tài)制備程序：

1、前一天晚上調單菌落至30 mlLB中過(guò)夜培養（12-16h）,按1：100 比例將過(guò)夜培養的菌液（500ul）加入到新鮮的50 ml LB培養液中，于37 ℃振蕩培養至OD600約為0.4(培養時(shí)間2h40～50min)。冰浴30分鐘后4度1000g離心10min，棄上清，收獲細菌。加入原體積十分之一（這里為5 ml）的1× TSS 液(冰預冷)懸浮細胞，然后分裝成100 ul/份，全部冰上操作，－80度保存。

三、  轉化時(shí)取一管（100 ul）感受態(tài)細菌，（凍寸細胞應置于冰上緩慢融化后立即使用）加入3-5ul DNA（0.1～100ng），輕輕混勻后冰浴30min。加入0.9ml含20mmol/L葡萄糖的LB培養液，37度150r/min溫和振蕩培養60min，涂布，室溫放置約20分鐘后放于37度恒溫培養箱過(guò)夜培養（17-20h）。

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