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    腺病毒體外在293細胞中大量擴增的方法



    錄入時(shí)間:2011-9-6 16:07:46 來(lái)源:腺病毒,293細胞

    一旦重組病毒已被純化和鑒定,即可在293 細胞中進(jìn)行大量擴增。本手冊提供了遞增培養規模和腺病毒感染周期的基本方法,按這一方法最終得到的病毒量約為3×1011~3×1012。由于一個(gè)細胞中所含的病毒顆粒為1000~10000,因此1L 培養細胞可得到約5×1012 病毒顆粒。如果要把病毒用氯化銫梯度離心純化,則必須至少3×108 的細胞,這樣才能正確分辨出病毒帶。對于蛋白表達,則根據需要可在任何一步擴增步驟中停止,離心沉淀細胞后按照適當的操作方法進(jìn)行蛋白抽提(根據蛋白類(lèi)型的不同抽提上清或細胞沉淀)。為優(yōu)化時(shí)間進(jìn)程,每個(gè)感染周期必須與下一次細胞擴增培養同步。如果由于各種原因不能同步,則必須將病毒凍存,直至下一次細胞培養開(kāi)始后再融化病毒。注意每次擴增都將會(huì )剩下一些病毒,這些病毒先不必丟棄,以便下一步擴增失敗時(shí)備用。每次擴增最好都用最低代的病毒顆粒,這樣產(chǎn)生突變型病毒的可能性會(huì )大大降低。

    操作步驟:

    1 在100mm 培養皿或75cm2 培養瓶中加入10ml DMEM5%培養5×106 293 細胞。

    2 取0.5ul 首次擴增的病毒保存液,加入DMEM5%至1ml,混勻,這樣稀釋得到的MOI 值約為5。

    3 移去培養液,小心加入病毒混合液,切勿破壞細胞單層,十字形慢慢晃動(dòng)3 次,37℃ CO2 孵箱中培養90 分鐘。

    4 加入9ml DMEM5%。

    5 再培養72 小時(shí),這時(shí)在10ml 溶液中大約有5×109~5×1010 個(gè)病毒顆粒,進(jìn)行MOI 測定以估計病毒顆粒。

    注:如果此時(shí)得到的病毒量已足夠,可立即進(jìn)行病毒滴度測定。收集細胞,600×g 離心5 分鐘沉淀細胞,去上清后加入最小體積(一般為原始體積的1/10 即1ml)病毒保存溶液重懸細胞。-200C /370C 凍融3 次,臺式離心機上以最大速率離心去除細胞碎片,收集上清,然后進(jìn)行病毒滴定。

    1  -20℃/37℃凍融3 次。

    2轉入15ml 無(wú)菌離心管中,臺式離心機上以最大速率離心10 分鐘,收集上清凍存于-20 ℃或-80 ℃。

    3  3 個(gè)175cm2 培養瓶中各加入107 293 細胞進(jìn)行培養。

    4  將3ml 細胞裂解液上清加入12ml DMEM5%中,混勻。移去細胞培養液,每瓶小心加入5ml 混合液,十字形慢慢晃動(dòng)混勻3 次,370C 5%CO2 孵箱中培養90 分鐘。此時(shí)MOI 值約為25。

    5 加入DMEM5%至30ml。

    6 再培養48~72 小時(shí)。此時(shí)10ml 培養液病毒量約為3×1010~3×1011。若需要,進(jìn)行MOI 測定以估計病毒滴度。

    注:如果此時(shí)病毒量已可以滿(mǎn)足實(shí)驗所需,則可立即進(jìn)入病毒滴定步驟。600×g 離心5 分鐘收集細胞,棄上清,加入1/10 原始體積的溶液重懸細胞。-200C /370C 凍融3 次,臺式離心機上以最大速率沉淀細胞碎片,收集上清,進(jìn)行病毒滴定。

    12. 移入50ml 離心管中,臺式離心機上最大速率離心10 分鐘,取出上清保存。

    13. 30 瓶175 cm2 培養瓶中每瓶各加入107 293 細胞。

    14. 將45ml 細胞裂解液上清加入105ml DMEM5%混勻,從培養瓶中移去培養液,加入5ml 混合液感染細胞,十字形緩慢晃動(dòng)3 次混勻,370C 培養90 分鐘。此時(shí)MOI 值約為25。

    15. 加入DMEM5%至30ml/瓶。

    16. 再培養48-72 小時(shí),此時(shí)約有3×1011~3×1012 個(gè)病毒。若需要,進(jìn)行MOI 測定估計病毒滴度。

    如果要收集病毒顆粒,先收集被感染細胞,然后重懸在5ml DMEM5%中。-200C /370C 凍融3 次,離心沉淀細胞碎片。此時(shí)5ml DMEM5%中3×1011~3×1012 個(gè)病毒顆粒,濃度為6×1010~6×1011vp/ml。然后測定病毒滴度,或者用標準的氯化銫密度梯度離心法純化病毒。

    在109 細胞中擴增病毒可獲得大量病毒保存液,而在1010 細胞中擴增則有一定技術(shù)性。切勿將擴增后的病毒保存液再用來(lái)感染細胞,因這會(huì )大大增加RCA 產(chǎn)生量。有時(shí)不得不使用純化空斑以最大可能降低RCA 產(chǎn)量。如果已沒(méi)有純化的空斑,那么就不得不重新空斑純化重組病毒,鑒定克隆后再進(jìn)行擴增。如果需要大于擴增4 輪后的病毒量,注意請用早期的病毒作為擴增源。比如,用第2 代病毒產(chǎn)生第3 代病毒。如果沒(méi)有第2 代病毒,那么必須用第1 代病毒來(lái)產(chǎn)生新的第2 代病毒。按這個(gè)原則進(jìn)行擴增可使RCA 水平盡可能低。

    如果用于表達蛋白,則可以收集細胞后根據蛋白特點(diǎn)選擇適當方法抽提蛋白。細胞沉淀中一般可提取1-5mg 蛋白,建議在小規模擴增后先測定感染后抽提蛋白的最佳時(shí)間,然后再大量擴增蛋白。

    腺病毒擴增

    第一代

    第二代

    第三代

    第四代

    每瓶細胞數

    1×105

    5×106

    1×107

    1×107

    培養瓶大。╟m2)

     

    75

    175

    175

     

     

    培養瓶數

    24 孔板1 孔

    1

    3

    30

     

     

    首次擴增后的病

     

     

    感染來(lái)源

    稀釋的空斑

     

    第二代病毒

    第三代病毒

     

     

    毒保存液

     

     

     

     

    0.5 mL 或

     

     

    每瓶接種量

    0.1 mL

     

    1 mL

    1.5 mL

     

     

    2.5×107

     

     

    總培養體積

    1 mL

    10 mL

    90 mL

    900 mL

    MOI

    0.01

    5

    25

    25

    滴度(VP/mL)

    1×108~9

    5×108~9

    3.3×108~9

    3.3×108~9

    總病毒量

    1×108~9

    5×109~10

    3×1010~11

    3×1011~12

     

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