一、實(shí)驗原理:
轉導是由噬菌體為媒介將一個(gè)細胞的遺傳物質(zhì)轉移給另一個(gè)細胞的過(guò)程。隨著(zhù)分子遺傳學(xué)的發(fā)展,轉導已成為基因精細結構分析的常用方法。轉導可分為局限性轉導和普遍性轉導二大類(lèi)。
本實(shí)驗試圖用局限性轉導為例,用噬菌體(λ)專(zhuān)一性轉導半乳糖發(fā)酵基因的現象來(lái)說(shuō)明轉導的基本原理。并初步掌握轉導實(shí)驗的基本方法。
用E Coli k12 (λ) gal 作為供體菌,此菌帶有原噬菌體(λ)?刂瓢肴樘前l(fā)酵的基因在細菌染色體上和(λ)緊密連鎖。當此菌體受紫外光誘導后,原噬菌體被釋放出來(lái),其中有一定比例的噬菌體帶有鄰近的半乳糖發(fā)酵基因。這種噬菌體稱(chēng)λdg,這種噬菌體在感染另一不能發(fā)酵半乳糖的菌體時(shí)(即受菌體)就有可能使其轉變成為能發(fā)酵半乳糖的菌體。整個(gè)過(guò)程可以下圖表示:
K12(λ)gal+(供體菌)
↓UV
λgal+
↓
K12 S gal-(受體菌)→ K12 S gal-/ (λ) gal+(轉導子)
上述轉導方式產(chǎn)生轉導子的頻率是很低的,稱(chēng)低頻轉導。我們選用K12(λ/λgal)雙重溶源菌作供體菌,它經(jīng)U、V誘導裂解后,可含有大量的帶gal+基因的轉導顆粒,故轉導頻率很高,稱(chēng)高頻轉導。
二、實(shí)驗材料:
大腸桿菌(E Coli)K12(λ)gal+,帶有原噬菌體(λ)和缺陷噬菌體(λdg)能發(fā)酵半乳糖,作為供體菌。
K12 S gal-,不帶噬菌體,不能發(fā)酵半乳糖,對噬菌體(λ)敏感。作為受體菌及測定噬菌體(λ)效價(jià)的指示菌。
三、實(shí)驗準備:
1.用具:6cm培養皿 1套
9cm培養皿 6套
1.5ml離心管 5支
離心管 2支
2.培養基
(1) LB液體培養基
(2) 加倍肉湯培養液2ml成分同LB培養液,濃度加倍。
(3) 半乳糖EMB培養基:伊紅(Y)0.4克、美蘭0.06克、半乳糖10克、蛋白胨10克、K2HPO4 2克、蒸餾水、1000ml、pH 7.0-7.2
(4) 磷酸緩沖液:5ml(用1×A)
KH2PO4 1.5g
K2HPO4 9g
蒸餾水 1000ml pH7.0
3.藥品:氯仿0.2ml
四、實(shí)驗步驟:
1.噬菌體的誘導和裂解液的制備
第一天:傍晚,從供體菌斜面挑取一環(huán)接種于5ml的LB培養液中,37℃培養過(guò)夜。
第二天:吸取1ml接種于裝有5ml LB培養液的離心管中,續培養3小時(shí)。(另吸取0.1ml,涂一皿,作供體菌對照)
供體菌培養物經(jīng)3000轉/分離心10分鐘棄去上清液,加4ml磷酸緩沖液制備成菌懸液。
吸取2ml到直徑6cm的培養皿中,經(jīng)紫外線(xiàn)處理(15瓦。燈距40厘米),打開(kāi)培養皿蓋子照射20秒鐘后加入加倍濃度的肉湯2ml,在37℃避光培養2-3小時(shí)。
用1ml移液槍把上述培養物轉入5ml的離心管中。再加0.2ml氯仿(4-5滴)。劇烈振蕩半分鐘,靜止5分鐘,以4000轉/分離心15分鐘。小心把上清液用無(wú)菌滴管轉稱(chēng)到另一試管,此即噬菌體(λ)的裂解液。
2.受體菌的制備。
第一天:傍晚,從受體菌斜面挑取一環(huán)接種于5ml LB培養液中,37℃培養過(guò)夜。
第二天:吸取1ml接種于裝有5ml LB培養液的離心管中,繼續培養3小時(shí)。
3.轉導實(shí)驗(點(diǎn)滴法):
取倒好的EMB培養基平板2只,在皿底用標記筆按下圖中的樣子畫(huà)好取一滿(mǎn)環(huán)受體菌,涂出一條菌帶,共涂?jì)蓷l。37℃培養1.5小時(shí),取出平板,在兩個(gè)圓圈和四個(gè)方格處,各加一環(huán)噬菌體裂解液,培養2天,觀(guān)察結果。
4.轉導頻率的測定:
取受體菌0.5ml于離心管中,在37℃預熱數分鐘后,加0.5ml噬菌體裂解液,搖勻,置37℃水浴中保溫15分鐘后,稀釋到10-3,取10-1、10-2和10-3的稀釋液0.1ml在預先倒好的EMB平板上涂布,同時(shí),取受體菌0.1ml涂一皿,作為對照,37℃培養48小時(shí),統計轉導子數目算出轉導頻率。
五、實(shí)驗結果:
1.點(diǎn)滴法結果
轉導實(shí)驗 |
點(diǎn)滴法 |
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受體菌 |
受體菌加噬菌體裂解液 |
菌落生長(cháng)情況 |
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菌落色澤 |
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2.轉導頻率測定
稀釋度 |
取樣 |
轉導子數/皿 |
轉導子數/毫升 |
10-2 |
0.1ml |
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10-3 |
0.1ml |
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