• <li id="iwaey"></li><li id="iwaey"><tt id="iwaey"></tt></li>
  • <td id="iwaey"><tt id="iwaey"></tt></td><li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li> <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li><button id="iwaey"></button>
  • <button id="iwaey"></button>
  • <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li>
  • <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li>
  • <button id="iwaey"></button>
    <li id="iwaey"></li>
  • 中文版  |   English  |   加入收藏  |   客服熱線(xiàn):400-0532-596
    海博微信公眾號
    海博天貓旗艦店
    微生物技術(shù)資料
    文章檢索
      首頁(yè) > 微生物知識->細菌基本知識和檢測方法->嗜酸乳桿菌推定的β-半乳糖苷酶基因在大腸桿菌中的功能性表達

    嗜酸乳桿菌推定的β-半乳糖苷酶基因在大腸桿菌中的功能性表達



    錄入時(shí)間:2011-3-8 14:02:41 來(lái)源:中國知網(wǎng)

    【摘要】  目的 在大腸桿菌中誘導表達以嗜酸乳桿菌克隆β半乳糖苷酶基因lacZ,為研究其酶學(xué)特性做準備。方法 從嗜酸乳桿菌ATCC 4356中克隆lacZ基因,并構建表達載體pET22blacZH、pQE31HlacZ和pQE31lacZ,然后在大腸桿菌中誘導表達,并測定表達產(chǎn)物的β半乳糖苷酶活性。結果 無(wú)標簽的重組嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶LacZ獲得了功能性表達,表達量可達2.28 kU/L.而融合HisTag的重組嗜酸乳桿菌LacZ卻失去了β半乳糖苷酶活性,即使復性也不能恢復。結論 克隆表達的成功為該酶的酶學(xué)性質(zhì)研究和可能的應用打下了基礎。
    【關(guān)鍵詞】  嗜酸乳桿菌; β半乳糖苷酶; 克隆表達; HisTag;復性
        【Abstract】  Objective To clone and express the lacZ gene of L. acidophilus in E. coli for research of the properties of the putative βgalactosidase. Methods  The lacZ gene was cloned from L. acidophilus ATCC 4356 and was inserted into three recombinant vectors: pET22blacZH, pQE31HlacZ and pQE31lacZ. The recombinant proteins were induced and were identified by SDSPAGE and βgalactosidase assay. Results The recombinant lacZ without tag was expressed as functional βgalactosidase, which yield was 2.28 kU/L, but the two recombinant LacZs with Histag were expressed as proteins without activity and its activity could not recovery by renaturation. Conclusion The study make a base for research of enzymatic properties and probable application in the future.
        【Key words】  Lactobacillus acidophilus;  βgalactosidase;  expression;  HisTag;  renaturation
        β-半乳糖苷酶(βgalactosidase,EC 3.2.1.23)因為能水解牛奶中的乳糖而廣泛的應用于乳品工業(yè)[1,2],又因為便利的顯色反應而普遍應用于分子生物學(xué)研究[3,4]。尋找新的β半乳糖苷酶可以促進(jìn)分子生物學(xué)研究和乳品工業(yè)發(fā)展。
        最近嗜酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus)NCFM菌株基因組DNA(GenBank accession No. CP000033)已完成測序[5]。該菌基因組攜帶有3個(gè)推定的β半乳糖苷酶編碼基因:lacA、lacZ和lacLM。已知lacLM基因編碼的β半乳糖苷酶是該菌降解乳糖的主要酶[6,7],而lacZ基因卻功能不明。迄今為止,還沒(méi)有關(guān)于該基因編碼產(chǎn)物的研究報道。嗜酸乳桿菌lacZ基因和著(zhù)名的大腸桿菌(Escherichia coli)lacZ基因雖然同名,其序列卻沒(méi)有相似性。該基因相似于極端環(huán)境微生物的屬于糖苷水解酶42家族(glycoside hydrolase family 42,GH42)的β半乳糖苷酶基因。極端環(huán)境微生物中的GH42 β半乳糖苷酶因耐熱[8]、耐鹽[9]、耐低溫[10]或有特殊的底物而受到關(guān)注。嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶LacZ可能同極端環(huán)境微生物的GH42 β半乳糖苷酶一樣,具有某種獨特的性質(zhì),從而應用于分子生物學(xué)研究或乳品工業(yè)。
        本實(shí)驗設計了3個(gè)克隆表達載體,試圖在大腸桿菌中大量表達嗜酸乳桿菌GH42β半乳糖苷酶LacZ,旨在為后續的酶學(xué)性質(zhì)研究提供依據。
       材料與方法
        1.1  菌株和質(zhì)粒
        嗜酸乳桿菌ATCC 4356購自中科院微生物研究所菌種保藏庫,培養條件為:在37 ℃下,于MRS培養液[6]中靜置培養24~48 h.大腸桿菌JM109和Rosetta菌株是本實(shí)驗室保存,培養條件為:在37 ℃下,于LB培養液中搖振培養過(guò)夜。選用本實(shí)驗室保存的質(zhì)粒pET22b和pQE31為表達載體。篩選條件為100 μg/ml的氨芐青霉素。
        1.2  嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶基因的PCR擴增
        嗜酸乳桿菌基因組DNA的提取方法參考文獻[11]。用嗜酸乳桿菌ATCC 4356的基因組DNA為模板,加入下列引物擴增嗜酸乳桿菌lacZ基因: P1:5′CAGGATCCGATGACACAATTATCACG
        TTTTC3′;P2:5′GGCTCGAGATTTCTCAATA
        CTTGAACATCC3′;P3:5′GCCTGCAGCTAAT
        TTCTCAATACTTGAACATCC3′;P4:5′CCGA
        ATTCTAGAGGAAATAAAATGACACAATTA
        TCACG3′.P1和P2擴增的是不帶終止密碼子的lacZ基因的編碼序列,擴增片段長(cháng)2 018 bp;P1和P3擴增的是帶有終止密碼子的lacZ基因編碼序列,擴增片段長(cháng)2 021 bp;P4和P3擴增的是從lacZ的RBS到終止密碼子之間的序列,擴增片段長(cháng)2 033 bp.PCR反應條件:94 ℃預變性5 min;95 ℃變性40 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸130 s,共20個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min.凝膠電泳檢測PCR結果,PCR純化試劑盒回收目的條帶。
        1.3  嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶表達載體構建
        分別用對應的內切酶對PCR產(chǎn)物和載體進(jìn)行雙酶切,膠回收后用T4DNA連接酶連接,再將連接產(chǎn)物電轉化入宿主菌株。共構建3個(gè)重組質(zhì)粒(見(jiàn)圖1):(a)是pET22blacZH,由P1和P2擴增的片斷和pET22b連接構成,lacZ基因置于T7啟動(dòng)子控制下,5′端帶有果膠酶信號肽序列,3′端帶有HisTag.轉化Rosetta菌株,以含氨芐青霉素的LB平板篩選。(b)是pQE31HlacZ,由P1和P3引物對擴增的片斷和pQE31連接而成,lacZ基因置于T5啟動(dòng)子控制下,5′端帶有HisTag.(c)是pQE31lacZ,由P4和P3引物對擴增的片斷和pQE31連接而成,lacZ基因置于T5啟動(dòng)子控制下,自帶RBS位點(diǎn),5′端和3′端沒(méi)有任何標簽和多余序列。(b)和(c)轉化JM109菌株,以含氨芐青霉素、XGal和IPTG的LB平板篩選。雙酶切和PCR初步鑒定重組質(zhì)粒,并送上海生工公司測序鑒定。
        1.4  重組嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶的誘導表達
        誘導方案為:誘導溫度設為37 ℃、30 ℃、25 ℃和20 ℃;誘導劑IPTG濃度設為:0.1、0.2、0.4、0.6和0.8 mmol/L;培養基設為含0.5 %乳糖的LB培養基和普通LB培養基。120 r/min搖床培養重組菌株pET22blacZH/Rosetta、pQE31HlacZ/JM109和pQE31lacZ/JM109各10 ml,培養至OD600≈0.6,加IPTG誘導8 h.取3 ml表達菌液,6 000×g離心2 min收集菌體,再用300 μl ddH2O將菌體混懸均勻,在冰上用超聲波破碎菌體,12 000×g離心30 min,收集上清液測定其β半乳糖苷酶比活力。重懸的超聲沉淀、超聲上清液和重懸的菌體一并做SDSPAGE分析。用Bradford法測定蛋白質(zhì)濃度。
        1.5  重組β半乳糖苷酶的酶活性測定
        酶活性測定方法根據文獻[12]修改:在200 μl反應液(22 mmol/L ONPG,50 mmol/L Na3PO4,pH 6.6)中加入10 μl適當稀釋的試驗樣品,37 ℃溫育10 min后,加入450 μl濃度為0.4 mol/L的Na2CO3溶液終止反應,于420 nm處測定OD值。設定在該反應條件下,每分鐘釋放1 μmol鄰硝基苯酚為1個(gè)酶活單位(U)。
        1.6  包涵體表達的重組β半乳糖苷酶的提取和復性
        根據誘導表達實(shí)驗結果,在37 ℃培養構建的3株重組菌株各500 ml,加終濃度為0.4 mmol/L的 IPTG誘導表達8 h,然后離心收集表達菌體,用buffer A(50 mmol/L Tris·Cl, 50 mmol/L NaCl,0.5 mmol/L EDTA,5 %甘油,pH 8.0)洗滌后,在冰浴中超聲破菌。然后按照文獻[13]的描述,用Triton X100提取和洗滌包涵體,再用尿素溶解包涵體。將包涵體溶解液在逐漸降低變性劑濃度的溶液中透析復性:透析液Ⅰ(2 mol/L尿素,20 mmol/L Tris·Cl,0.1 mmol/L GSSG,0.9 mmol/L GSH, pH 8.0),透析液Ⅱ(0.5 mol/L尿素,20 mmol/L Tris·Cl,0.1 mmol/L GSSG,0.9 mmol/L GSH,pH 8.0),透析液Ⅲ(50 mmol/L Tris·Cl,50 mmol/L NaCl,1 mmol/L EDTA,70 μl/L β巰基乙醇,pH 8.0)。SDSPAGE電泳和β半乳糖苷酶活性測定檢測效果。用Bradford法測定蛋白質(zhì)濃度。
    結果
        2.1  嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶基因的表達載體
        以嗜酸乳桿菌基因組DNA為模板的3個(gè)PCR均得到了預期條帶。酶切、連接和電轉化后,均篩選到了轉化子。其中pQE31lacZ/JM109的轉化子在篩選平板上呈現為藍色菌落;而pQE31Hlac Z/JM109的轉化子在篩選平板上仍然呈現為白色菌落。這個(gè)現象提示pQE31lac Z/JM109菌株表達了有活性的重組β半乳糖苷酶,而pQE31Hlac菌株表達的重組β半乳糖苷酶可能沒(méi)有活性。雙酶切、PCR(見(jiàn)圖2)及測序證實(shí)3種重組質(zhì)粒pET22blacZH、pQE31HlacZ和pQE31lacZ均構建成功。測序表明克隆序列和嗜酸乳桿菌NCFM菌株lacZ序列100 %相同。序列提交GenBank,登錄號為:EU590652.
        2.2  重組嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶的表達形式
        經(jīng)檢測,在各誘導條件下,菌株pET22blacZH/Rosetta的超聲上清液的β半乳糖苷酶比活力和對照菌株(pET22b /Rosetta)超聲上清液的β半乳糖苷酶比活力都沒(méi)有顯著(zhù)區別,表明該重組菌株很可能不表達有活性的重組LacZ.SDSPAGE結果顯示在全菌樣品和超聲沉淀樣品中均存在一個(gè)顯著(zhù)的約70 kDa(接近嗜酸乳桿菌LacZ的理論分子量76 583 Da)的表達條帶,但是在超聲上清液中卻沒(méi)有明顯的70 kDa表達條帶(見(jiàn)圖3B)。因此判定C端融合HisTag的重組LacZ的表達形式為包涵體表達。
        pQE31HlacZ/JM109在各誘導條件下的超聲上清液中都測不到β半乳糖苷酶酶活,表明該重組菌株不能表達有活性的重組LacZ.SDSPAGE顯示了和pET22blacZH/Rosetta相似的結果(見(jiàn)圖3A),因此判定N端融合HisTag的重組LacZ的表達形式也為包涵體表達。
        pQE31lacZ/JM109在各誘導條件下均能在超聲上清液中檢測到β半乳糖苷酶酶活性,說(shuō)明該菌株實(shí)現了無(wú)標簽重組LacZ的可溶性表達。在誘導條件為25 ℃、0.4 mmol/L IPTG和含0.5 %乳糖的LB培養基時(shí),超聲上清液中β半乳糖苷酶活性最高,比活力達到1.14 U/mg。據此推算,誘導后菌液中的β半乳糖苷酶單位約為2.28 kU/L.SDSPAGE顯示在超聲上清液中有明顯的表達條帶(見(jiàn)圖3D)。不過(guò)在37 ℃下卻主要為包涵體表達,超聲上清液中的表達條帶減弱(見(jiàn)圖3C)。相應的,超聲上清液的β半乳糖苷酶比活力也下降到0.18 U/mg.
        2.3  包涵體表達的重組蛋白的復性
        C端標記LacZ經(jīng)透析復性后,測得復性后的目標蛋白溶液的濃度為0.43 mg/ml.酶活性測定表明復性蛋白沒(méi)有β半乳糖苷酶活性。N端標記LacZ經(jīng)透析復性后,測得復性后的目標蛋白溶液的濃度為0.35 mg/ml.酶活性測定表明復性蛋白也沒(méi)有β半乳糖苷酶活性。而無(wú)標簽重組LacZ經(jīng)透析復性后,測得復性后的目標蛋白溶液的濃度為1.16 mg/ml.酶活性測定表明復性蛋白溶液β半乳糖苷酶活性含量為10.1 U/ml,比活力為8.72 U/mg.
       討論
        重組菌株pQE31lacZ/JM109在篩選板上長(cháng)出藍色菌落;誘導后,其超聲上清液具有β半乳糖苷酶活性(1.14 U/mg,25 ℃),SDSPAGE圖上顯示了明顯的重組嗜酸乳桿菌LacZ條帶(70 kDa);表達為包涵體的重組嗜酸乳桿菌LacZ也復性成功(8.72 U/mg)。這一組實(shí)驗結果表明無(wú)標簽的重組嗜酸乳桿菌LacZ實(shí)現了功能性表達。
        重組菌株pQE31HlacZ/JM109和pET22blacZH/Rosetta雖然都在SDSPAGE圖上顯示了明顯的重組嗜酸乳桿菌LacZ條帶(70 kDa),但是在超聲上清液中卻沒(méi)有重組β半乳糖苷酶活性。這說(shuō)明重組蛋白的表達形式是包涵體。在包涵體復性實(shí)驗中,兩種重組β半乳糖苷酶(HLacZ和LacZH)都不能測得酶活性。說(shuō)明這兩種重組β半乳糖苷酶都沒(méi)能重折疊為有活性的構象。比較無(wú)標簽重組LacZ的成功復性,作者推論,很可能是融合的HisTag阻礙了重組蛋白的正確折疊。利用NCBI網(wǎng)站的保守結構域檢索工具進(jìn)行檢索,發(fā)現嗜酸乳桿菌LacZ的C端和N端均存在保守結構域,分別稱(chēng)為GH42 β半乳糖苷酶N端結構域和GH42 β半乳糖苷酶C端結構域。顯然HisTag對這兩個(gè)結構域的影響是復性失敗的可能原因。
        重組質(zhì)粒pQE31lacZ的克隆方式是獨特的。該克隆方式可確保重組蛋白的氨基酸序列不會(huì )因克隆帶上附加序列。如果只利用pQE31質(zhì)粒多克隆位點(diǎn)(MCS)的酶切位點(diǎn)構建重組質(zhì)粒,表達的重組蛋白的N端將帶上有利于純化的HisTag.但是HisTag有可能會(huì )影響重組蛋白的活性。如果利用pQE31質(zhì)粒lacO與RBS之間的Eco R I酶切位點(diǎn)和MCS上的任意酶切位點(diǎn)構建重組質(zhì)粒,就能切掉pQE31質(zhì)粒的HisTag和RBS位點(diǎn)。在目標片段上帶上RBS,表達的重組蛋白將沒(méi)有任何附加的氨基酸殘基,這就確保不會(huì )因克隆而導致重組蛋白不同于親本蛋白。若為了研究蛋白的活性而進(jìn)行的克隆,顯然這個(gè)克隆策略最好。
        嗜酸乳桿菌β半乳糖苷酶LacZ和極端環(huán)境微生物的GH42 β半乳糖苷酶屬于同一糖苷水解酶家族,很可能該酶像極端環(huán)境微生物的GH42 β半乳糖苷酶一樣具有令人感興趣的酶學(xué)特性。目前還沒(méi)有該酶的克隆表達報道。本文設計了3個(gè)表達載體,表達了3種重組LacZ,分別為N端標記HisTag、C端標記HisTag和無(wú)標簽的重組LacZ.其中無(wú)標簽重組LacZ實(shí)現了功能性表達,為該酶的酶學(xué)性質(zhì)研究和可能的應用打下了基礎。
    作者:潘渠  胡福泉  陳恬  邱岳  王廣科  李晉川《成都醫學(xué)院學(xué)報》
    【參考文獻】
      [1] Bakken AP, Hill CG, Amundson CH, et al. Hydrolysis of Lactose in Skim Milk by Immobilized betagalactosidase (bacillus circulans) [J]. Biotechnol Bioeng, 1992, 39(4):408417.
    [2] Chen W, Chen H, Xia Y, et al. Production, Purification, and Characterization of a Potential Thermostable Galactosidase for Milk Lactose Hydrolysis from Bacillus stearothermophilus[J]. J Dairy Sci, 2008, 91(5):1 7511 758.
    [3] Liu WF, Gao D, Wang ZN. Expression of the Extracellular Domain of the Human Immunodeficiency virus Type 1 Envelope Protein and Its Fusion with betagalactosidase in Saccharomyces cerevisiae[J]. Clin Diagn Lab Immunol, 1998, 5(4):592594.
    [4] Cannio R, de PD, Rossi M, et al. Gene Expression of a Thermostable betagalactosidase in Mammalian Cells and Its Application in Assays of Eukaryotic Promoter Activity [J]. Biotechnol Appl Biochem, 1994, 19 ( Pt 2):233244.
     
    [5] Altermann E, Russell WM, AzcaratePeril MA , et al. Complete Genome Sequence of the Probiotic Lactic Acid Bacterium Lactobacillus acidophilus NCFM [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2005, 102(11):3 9063 912.
    [6] Nguyen TH, Splechtna B, Krasteva S, et al. Characterization and Molecular Cloning of a Heterodimeric betagalactosidase from the Probiotic Strain Lactobacillus acidophilus R22 [J]. FEMS Microbiol Lett, 2007, 269(1):136144.
    [7] W M Russell, T R Klaenhammer. Efficient System for Directed Integration into the Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus gasseri Chromosomes via Homologous Recombination [J]. Appl Environ Microbiol, 2001, 67(9):4 3614 364.
    [8] Reyhan GulGuven, Kemal Guven, Annarita Poli, et al. Purification and Some Properties of a βgalactosidase from the Thermoacidophilic Alicyclobacillus acidocaldarius subsp. rittmannii Isolated from Antarctica [J]. Enzyme and Microbial Technology, 2007, 40(6):1 5701 577.
    [9] Holmes ML, DyallSmith ML. Sequence and Expression of a Halobacterial betagalactosidase Gene [J]. Mol Microbiol, 2000, 36(1):114122.
    [10] Coombs JM, Brenchley JE. Biochemical and Phylogenetic Analyses of a Coldactive betagalactosidase from the Lactic Acid Bacterium Carnobacterium piscicola BA [J]. Appl Environ Microbiol, 1999, 65(12):5 4435 450.
    [11] 潘渠,李晉川,叢延廣,等.嗜酸乳酸桿菌 ATCC 4356菌株異源二聚體β半乳糖苷酶的克隆表達 [J]. 微生物學(xué)報, 2008, 48(10):1 3391 343.
    [12] Nguyen TH, Splechtna B, Yamabhai M, et al. Cloning and Expression of the betagalactosidase Genes from Lactobacillus reuteri in Escherichia coli [J]. J Biotechnol, 2007, 129(4):581591.
    [13] J. 薩姆布魯克,D. W. 拉塞爾. 分子克隆實(shí)驗指南[M].第3版.北京:科學(xué)出版社,2006:1 2561 260.

     

    上一篇:石韋醇提物抑菌活性的初步研究

    下一篇:麻瘋樹(shù)提取物體外抗病毒和殺菌作用的初步研究

    相關(guān)文章:
    嗜酸乳桿菌 嗜酸乳桿菌檢驗標準操作程序
    紅假單胞菌屬各種的描述之嗜酸紅假單胞菌 嗜酸兩面菌屬、金屬球菌屬和硫化葉菌屬
    嗜酸菌簡(jiǎn)介 嗜熱菌、嗜鹽菌與嗜酸菌
    嗜酸微生物 嗜酸乳桿菌對螺旋形和球形幽門(mén)螺桿菌黏附拮抗作用的研究
    嗜酸乳桿菌對致瀉性大腸埃希氏菌上皮細胞粘附和侵襲的抑制作用 嗜酸乳桿菌酸耐受性的研究_3
    首頁(yè) | 關(guān)于我們 | 網(wǎng)上商城 | 在線(xiàn)客服 | 聯(lián)系我們
    業(yè)務(wù)聯(lián)系電話(huà)
       400-0532-596 0532-66087773
       0532-66087762 0532-81935169
    郵箱:qdhbywg@vip.126.com
    地址:青島市城陽(yáng)區錦匯路1號A2棟
    產(chǎn)品技術(shù)咨詢(xún)
      工作日(周一至周六8:00-18:00):
      18562658263 13176865511
      其它時(shí)段:13105190021
    投訴與建議:13105190021 13006536294
    (注:以上手機號均與微信同號)
    2022露脸国产偷人在视频_免费播放婬乱男女婬视频国产_JAPANESE丰满爆乳日本_被黑人强伦姧人妻完整版
  • <li id="iwaey"></li><li id="iwaey"><tt id="iwaey"></tt></li>
  • <td id="iwaey"><tt id="iwaey"></tt></td><li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li> <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li><button id="iwaey"></button>
  • <button id="iwaey"></button>
  • <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li>
  • <li id="iwaey"><menu id="iwaey"></menu></li>
  • <button id="iwaey"></button>
    <li id="iwaey"></li>