志賀菌外排泵基因emrE的克隆表達及進(jìn)化分析

【摘要】  目的 研究志賀菌外排泵基因emrE的耐藥功能及其進(jìn)化。方法以志賀菌臨床多重耐藥株H24基因組為模板，擴增出含emrE基因的1126bp DNA片段，將所得片段與pMD18-T載體連接，轉化大腸埃希菌DH5α，對陽(yáng)性克隆酶切鑒定和測序；用瓊脂平皿二倍稀釋法對重組菌株進(jìn)行藥敏測定并測定泵抑制劑CCCP對MIC值的影響；通過(guò)RT-PCR從mRNA水平檢測emrE的表達水平；通過(guò)Genbank數據庫對基因序列進(jìn)行同源性比對，建立進(jìn)化樹(shù)并分析同源基因之間的關(guān)系。結果含emrE基因質(zhì)�？梢蕴岣叽竽c埃希菌對四環(huán)素耐藥性1倍，對紅霉素的耐藥性1倍；對emrE基因的同源分析顯示H24菌株和大腸埃希菌、其它志賀菌可歸為相近一族，同源性在92%以上，與同屬于腸桿菌科的歐文桿菌和沙門(mén)菌的同源性分別為70%和60%；與親緣關(guān)系較遠革蘭陽(yáng)性菌除蟲(chóng)鏈霉菌和結核分枝桿菌的同源性?xún)H為47%和48%。結論 志賀菌耐藥株H24的emrE基因與對四環(huán)素及紅霉素的耐藥性相關(guān)，依據現有數據進(jìn)行的emrE基因同源分析未發(fā)現有明顯的基因水平轉移現象。

【關(guān)鍵詞】  志賀菌； emrE基因； 外排泵；耐藥； 基因水平轉移

    ABSTRACT  Objective  To study the function and phylogenetics of the active efflux pump gene emrE in clinical isolates of Shigella.  Methods  The active efflux pump gene emrE was amplified by PCR and ligated with the pMD18-T plasmid to construct the recombinant pMD-emrE, and the pMD-emrE was transformed into E.coli DH5α. The positive bacterial clones were identified by restriction enzyme digestion, and the gene of isolates was sequenced and analyzed. Drug susceptibility of the recombinant strain was tested by the two fold agar dilution method; phylogenic tree was constructed with the data of the gene sequences from Genbank.  Results Plasmid pMD-emrE can elevate the resistance level of E.coli to tetracyclin by one fold and erythromycin by one fold. Analysis of emrE phylogenic tree indicated that strain H24, all strains of E.coli and all other strains of Shigella could be classified into one group with 92% gene sequence identity. Strains of Erwinia and Salmonella, which also beloned to Enterobacteriaceae, had 70% and 60% sequence identity with H24. Streptomyces avermitilis and Mycobacterium tuberculosis were only 47% and 48% sequence identity with H24.  Conclusions  The gene emrE was related to the resistance of tetracycline and erythromycin in the drug resistance strain H24. Phylogenic tree analysis indicates it was scarce for emrE to develop horizontal gene transferring among different bacterial genomes.

    KEY WORDS  Shigella;emrE;Active efflux pump;Antibiotic resistance;Horizontal gene transfer

    志賀菌屬(Shigella)細菌是急性感染性腹瀉的主要病原體之一。全世界每年由志賀菌引起的感染病例數超過(guò)2億，約占腹瀉病例的15%以上［1］。我國以福氏和宋氏志賀菌引起的痢疾最為常見(jiàn)。臨床上志賀菌對抗生素和其它化學(xué)藥物的耐藥性日趨嚴重，如對目前臨床廣泛使用的喹喏酮類(lèi)藥物的耐藥率已達40%以上，嚴重影響了臨床治療效果［2］。鑒于志賀菌對人類(lèi)的嚴重危害性，研究志賀菌多重耐藥機制，調查這些基因的特性及分布進(jìn)化，對臨床病原菌多重耐藥性的治療具有重要意義。

    主動(dòng)藥物外排(active drug efflux)或稱(chēng)外排泵系統(efflux pump system)耐藥機制的研究始于20世紀80年代關(guān)于大腸埃希菌對四環(huán)素耐藥機制的研究［3］。目前已發(fā)現主動(dòng)外排泵系統廣泛存在于革蘭陰性細菌和革蘭陽(yáng)性細菌中，它們在細菌的多重耐藥中發(fā)揮著(zhù)重要作用［4～6］。1998年，Ghosh等發(fā)現志賀菌中存在著(zhù)主動(dòng)外排機制［7］，國內楊海燕等證實(shí)了志賀菌內也存在著(zhù)Acrab-Tolc泵，它在喹諾酮類(lèi)藥物耐藥中起重要作用［8］，但目前為止尚缺少對其它志賀菌外排泵引起耐藥性的深入研究。

    H24是本實(shí)驗室保存的從鄭州市和江西省銅鼓縣采集的臨床致病志賀菌中篩選出的具有很強的多重耐藥菌株之一［9］，現已克隆了該菌株多個(gè)多重耐藥主動(dòng)外排泵基因。期望通過(guò)這些基因的耐藥特性研究和用這些耐藥基因建立藥物篩選模型，發(fā)現有針對性的抗菌藥物，如耐藥主動(dòng)外排泵抑制劑等。

    外排泵基因emrE屬于小多重耐藥性家族(SMR)。SMR耐藥泵家族是已知細菌中最小的多重耐藥外排泵。通常由100多個(gè)氨基酸組成，形成四個(gè)跨膜螺旋。前3個(gè)跨膜螺旋為雙親性，含有許多保守的谷氨酸、絲氨酸、酪氨酸及色氨酸殘基，這些殘基的側鏈與底物的疏水區域直接作用而介導它們的跨膜轉運。SMR轉運蛋白為PMF能量來(lái)源型(第二類(lèi)主動(dòng)外排系統)［10］。SMR家族成員均來(lái)自于細菌，其中最典型的是大腸埃希菌的EmrE泵。通過(guò)對大腸埃希菌的EmrE泵研究發(fā)現SMR耐藥泵是通過(guò)多聚體的形式發(fā)揮功能的，形成同源三聚體［11，12］或四聚體［13］。目前已在多種菌株中發(fā)現emrE外排泵基因的分布，但其序列有較大差異，其進(jìn)化意義和生理意義尚不十分明了。大腸埃希菌中emrE編碼的外排泵蛋白能引起對甲基紫精、四苯溴化磷、溴化乙啶、吖啶黃、結晶紫及紅霉素、四環(huán)素和磺胺嘧啶等的耐藥性［14，15］。本文報道克隆了包括調控序列在內的完整志賀菌emrE耐藥泵基因，并在大腸埃希菌中測定了它的耐藥特性，同時(shí)初步分析了該基因在細菌中的分布和進(jìn)化關(guān)系，為近一步進(jìn)行耐藥性研究奠定了基礎。

    1  材料與方法

    1.1  材料

    (1)菌種及質(zhì)粒  大腸埃希菌DH5α及臨床分離志賀菌多重耐藥株H24由鄭州大學(xué)公共衛生學(xué)院流行病教研室收集保存；大腸埃希菌藥敏質(zhì)控株ATCC25922由河南省疾病預防控制中心惠贈；pMD18-T載體購自大連TaKaRa公司。pMD18-T載體由pUC18改建而成，在pUC18載體的多克隆位點(diǎn)處的XbaI和SalI識別位點(diǎn)之間插入了EcoRV識別位點(diǎn)，用EcoRV進(jìn)行酶切后，再在兩側的3′端添加“T”而成。它易于與PCR產(chǎn)物聯(lián)接并與pUC18具有相同的功能，選擇標記為氨芐西林抗性基因，通常用作克隆載體，但也能適度表達。

    (2)工具酶及試劑  SacI內切酶、BamHI內切酶、胰RNA酶、DNA回收試劑盒均為T(mén)aKaRa公司產(chǎn)品；抗生素購自中國藥品生物制品檢定所；酵母提取物和蛋白胨為Oxiod公司產(chǎn)品。泵抑制劑氰氯苯腙(CCCP)為Sigma公司產(chǎn)品。MH培養基為北京奧博星公司產(chǎn)品。Trizol RNA提取試劑盒，AMV反轉錄酶試劑盒購自上海生工生物工程有限公司。

    1.2  志賀菌臨床株多重耐藥株的篩選

    在MH培養基上用瓊脂平皿二倍稀釋法測定臨床收集的30株志賀菌耐藥株對四環(huán)素、氯霉素、紅霉素、慶大霉素、環(huán)丙沙星、磺胺和硫酸鏈霉素的最低抑菌濃度(MIC)。標準質(zhì)控菌為ATCC25922。

    1.3  志賀菌基因組DNA的提取

    按常規方法進(jìn)行［16］。

    1.4  志賀菌臨床株多重耐藥株emrE基因片段的獲取

    (1)基因擴增  從GenBank中查到志賀菌emrE基因序列，利用Primer 5.0設計引物。引物設計的位點(diǎn)包含有emrE基因的調控序列，同時(shí)使其自身的啟動(dòng)子與pMD-T載體的lac啟動(dòng)子在同一方向上但與lac啟動(dòng)子相隔約300bp，以期用自身的啟動(dòng)子表達［15］。上游引物P1為CGGGAGCTCAGCCTCAG-TTTCTATG，下游引物P2為GCGGATCCAACAG-TCCAGTGCC。引物由北京賽百盛公司合成。以志賀菌臨床多重耐藥株H24為模板，以P1和P2為引物進(jìn)行PCR擴增。PCR條件為：95℃ 5min，94℃ 40s，58℃ 45s，72℃ 90s，30個(gè)循環(huán)，72℃延伸10min。對PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳，膠濃度為1%。

    (2)目的片段的回收  PCR產(chǎn)物計50μl，1%瓊脂糖凝膠電泳后，用TaKaRa公司的DNA快速回收試劑盒回收，方法參考產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)。

    1.5  pMD-emrE重組質(zhì)粒的構建

    PCR擴增片段經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳后用TaKaRa公司片段回收試劑盒回收目的片段，再與pMD18-T載體在16℃連接過(guò)夜。用連接產(chǎn)物轉化大腸埃希菌DH5α，涂布于含60μg/ml Amp的LB瓊脂平板上，37℃培養過(guò)夜后，利用藍白斑篩選挑取少許白色單克隆，在含Amp的LB液體培養基中培養過(guò)夜。堿裂解法從菌液中提取質(zhì)粒，用SacI單酶切及SacI和BamHI雙酶切進(jìn)行鑒定。

    1.6  pMD-emrE重組菌株耐藥性測定及CCCP對其耐藥性的影響

    以轉入pMD18-T空質(zhì)粒的DH5α菌為對照，采用瓊脂平皿二倍稀釋法測定上述7種抗生素對篩選出的pMD-emrE重組菌株的MIC。同時(shí)在另一組含抗生素的MH瓊脂平板中加入CCCP至20μmol/L測定細菌的MIC值。

    1.7  RT-PCR檢測pMD-emrE重組菌株及pMD18-T空白對照株emrE基因的表達水平

    利用Trizol RNA提取試劑盒提取pMD-emrE重組菌株的總RNA，并用AMV反轉錄試劑盒進(jìn)行反轉錄，得到2株菌的cDNA，利用Primer 5.0設計引物P3(GGGTTTACACGGTTATGGC)和P4(CTATGATGGCTGGCAGGTC)，擴增emrE基因內部的190bp DNA片段；引物P5(CTGGTCCGTCTAAA-GACAACA)、P6(ACGAACGGTCAGGTCAACTA)擴增大腸埃希菌內穩定表達的看家基因-編碼甘油醛3-磷酸脫氫酶的gapA基因的380bp片段作為內參。分別以2株菌的cDNA為模板，同一反應管中同時(shí)擴增emrE基因片段及甘油醛3-磷酸脫氫酶gapA基因片段。每個(gè)菌株測3次，每次都采用相同的反應條件。循環(huán)擴增條件：94℃ 5min，94℃ 40s，52℃ 45s，72℃ 90s，72℃延伸10min。擴增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳后進(jìn)行凝膠掃描半定量分析。

    1.8  序列測定及分子進(jìn)化研究

    取酶切鑒定正確的重組質(zhì)粒進(jìn)行純化并由上海生物工程有限公司測序。測序結果利用DNAStar軟件分析找出emrE基因的編碼框，用BLASTn在Genbank中搜索同源序列，分析其結果。用在Genbank搜索出已報道的emrE的編碼序列，經(jīng)MEGA3進(jìn)行序列比對并構建分子進(jìn)化樹(shù)。

2  結果

    2.1  耐藥株的篩選

    利用瓊脂平皿二倍稀釋法篩選出的臨床志賀菌多重耐藥株H24對7種抗生素均呈不同程度的耐藥性，結果見(jiàn)表1。結果顯示該菌對四環(huán)素、紅霉素、氯霉素和硫酸鏈霉素MIC值都在64μg/ml以上，呈高度耐藥；對環(huán)丙沙星、慶大霉素等抗生素耐藥程度則較輕。

    2.2  emrE基因的PCR擴增

    用所合成的一對引物PCR擴增福氏志賀菌H24的emrE基因，擴增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析，在約1126bp處有一特異擴增條帶，分子量大小與預期擴增值相符(圖1)。

    2.3  pMD-emrE重組質(zhì)粒的鑒定

    用SacI單酶切和SacI和BamHI雙酶切對所提質(zhì)粒進(jìn)行鑒定，經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳后，確認得到了含目標基因的重組質(zhì)粒(圖2)。

    2.4  重組大腸埃希菌菌株的耐藥性檢測及CCCP對其耐藥性的影響

    重組大腸埃希菌菌株的MIC如表2所示，結果表明攜帶有重組pMD-emrE質(zhì)粒的菌株與攜帶空質(zhì)粒的菌株相比耐藥性有所增強。對紅霉素和四環(huán)素的MIC均為對照株的2倍，顯示該基因有增強細菌耐藥性的作用。加入CCCP后，2株菌對不同抗生素的MIC值均有不同程度的下降，并且下降到了同一水平，顯示耐藥性對跨膜質(zhì)子梯度的依賴(lài)性(表2)。表1      志賀菌多重耐藥株H24的MIC(μg/ml)（略表2    重組菌株pMD-emrE的MIC(μg/ml)（略 ）

    2.5  RT-PCR結果

    對pMD-emrE重組菌株及帶有空質(zhì)粒的對照株用RT-PCR檢測emrE基因的mRNA相對表達水平。emrE擴增片段的亮度以gapA片段為100%對照。三次凝膠掃描半定量檢測結果顯示pMD-emrE重組菌株emrE表達量增強，相對強度為對照的5.27倍。結果經(jīng)t測驗，差異極顯著(zhù)(P<0.01，圖3和表3)。

    2.6  測序結果的序列分析及分子進(jìn)化樹(shù)的構建

    志賀菌臨床耐藥株H24 emrE基因測序結果經(jīng)BLASTn與Genbank中的宋氏志賀菌株S.sonnei Ss046的emrE基因堿基序列比較分析，兩者完全一 表3    pMD-emrE重組菌株emrE表達量的RT-PCR（略 ）致；與福氏志賀菌2a 301株、福氏志賀菌5及福氏志賀菌2a 477株、大腸埃希菌CFT01株和536等菌株的DNA序列一致性為98%，肽鏈的一致性為100%；與大腸埃希菌0157∶H7和K12等菌株的DNA序列一致性為92%，肽鏈的一致性為98%。在這些基因序列的變化中，多為同義突變，顯示emrE耐藥泵基因的保守性，結果見(jiàn)表4。

    利用在Genbank中檢索到的不同菌株的emrE基因序列構建的分子進(jìn)化樹(shù)如圖4所示。志賀菌和大腸埃希菌聚集為一族。該族可分為三個(gè)亞群：宋氏志賀菌為第一亞群；福氏志賀菌和大腸埃希菌536等為第二亞群；大腸埃希菌K-12和0157為第三亞群。在該族菌株中未發(fā)現含有與其它種屬非常相近的emrE基因序列，也未在其它種屬菌株中發(fā)現與志賀菌和大腸埃希菌族非常相近的emrE基因序列。顯示了該基因的種屬特征性和穩定性。對于其它菌株也表現出在進(jìn)化分類(lèi)上距離愈遠，進(jìn)化樹(shù)上距離也愈遠的規律，有較好相關(guān)性。

    3  討論

    本研究克隆出志賀菌臨床耐藥株H24包括調控序列在內的emrE基因并連接到pMD18-T質(zhì)粒上，該質(zhì)粒為高拷貝質(zhì)粒，emrE帶有自身的調控序列，可在自身的啟動(dòng)子調控下進(jìn)行表達。通過(guò)測定重組菌株的MIC，發(fā)現攜帶有emrE基因的重組菌株與未攜帶該基因的菌株相比對四環(huán)素和紅霉素的MIC值均提高了1倍，而對其它5種抗生素的MIC值則無(wú)變化。RT-PCR結果也證實(shí)了pMD-emrE重組菌emrE基因的表達水平比pMD18-T對照株有顯著(zhù)提高。由此可見(jiàn)H24菌株emrE基因在大腸埃希菌中得到了較高表4        志賀菌和大腸埃希菌與H24菌株emrE基因的DNA和肽鏈序列差異（略 ）

    強度的表達。這與已報道的大腸埃希菌emrE基因的功能是相似的［17］。加入質(zhì)子泵抑制劑CCCP后，重組株和對照株對四環(huán)素和紅霉素的耐藥性降低到同一水平，確認了emrE外排泵是質(zhì)子泵。另外，加入CCCP后這兩株菌對7種抗生素的MIC值均有較大幅度的下降，說(shuō)明在這兩株菌中還存在著(zhù)其它以質(zhì)子梯度為能量的外排泵。志賀菌臨床耐藥株H24對四環(huán)素和紅霉素的MIC值都為128μg/ml，而該耐藥株的emrE基因在大腸埃希菌中表達量提高后僅使它們對四環(huán)素和紅霉素的耐藥性分別達到8和16μg/ml(大腸埃希菌受體菌對照的MIC值分別為4和8μg/ml)，說(shuō)明志賀菌臨床耐藥株H24對四環(huán)素和紅霉素的耐藥性可能還有其它的耐藥基因在發(fā)揮著(zhù)作用。

    通過(guò)檢索發(fā)現，Genbank中200多種已經(jīng)測出全基因組序列的微生物中共有20多種菌株有emrE基因，在此基礎上進(jìn)行同源性分析并構建進(jìn)化樹(shù)，發(fā)現宋氏志賀菌與親緣關(guān)系很近的福氏志賀菌及大腸埃希菌(基因組分析顯示志賀菌是大腸埃希菌復合群的一類(lèi)［17］)的emrE序列的同源性非常高，在92%以上；與同屬于腸桿菌科的歐文桿菌和沙門(mén)菌的同源性分別為70%和60%；而與親緣關(guān)系較遠革蘭陽(yáng)性菌除蟲(chóng)鏈霉菌和結核分枝桿菌的同源性?xún)H為47%和48%�？梢�(jiàn)親緣關(guān)系較近菌株的emrE序列同源性非常高而親緣關(guān)系較遠的序列差異較大。目前尚未發(fā)現親緣關(guān)系較遠而emrE序列同源性較高的菌株，因此可以推測emrE基因所介導的耐藥是細菌在長(cháng)期進(jìn)化中形成的，現有資料未發(fā)現emrE基因在近代發(fā)生明顯的水平轉移現象。

    現代基因組學(xué)研究揭示微生物之間的基因水平轉移發(fā)生的頻率很高［18，19］，但為什么emrE基因的種屬歸屬性這樣強？盡管臨床上四環(huán)素和紅霉素已應用多年，在生態(tài)環(huán)境中有很高的選擇壓力，但以上分析未發(fā)現emrE基因有明顯水平轉移。在其它耐藥泵基因的研究中，也有發(fā)現有類(lèi)似的保守現象［8，20］。分析原因可能有兩點(diǎn)：第一，微生物在自然生態(tài)環(huán)境中面臨著(zhù)許多有害物質(zhì)和其它生態(tài)壓力因素，有很多方面的選擇壓力在起作用，抗生素僅是其中一種；第二，我們近期研究發(fā)現許多重耐藥外排泵不僅能泵出有害物質(zhì)，也能泵出某些重要營(yíng)養物質(zhì)，這可能是耐藥泵快速進(jìn)化(泵出能力的垂直進(jìn)化和基因水平轉移進(jìn)化)的一個(gè)重要制約因素。不同類(lèi)群菌株的emrE基因可能只適合于特定菌群的遺傳背景。關(guān)于不同微生物來(lái)源的emrE基因的功能差異和生理意義還待進(jìn)一步研究。

 

  作者：吳健 張少平 穆瑞瑞 丁毅 郗園林 段廣才  《中國抗生素雜志》

  ［1］ Kotloff K L, Winickoff T P, Ivanoff B, et al. Global burden of Shigella infections: implications for vaccine development implementation of control strategies ［J］. Bull WHO,1999,77(8):651～666.

［2］ 裴紅生，唐耀武. 北京市1990～1997年細菌性痢疾流行病學(xué)分析［J］. 疾病監測，1998，13(11)：408～412.

［3］ McMurry L, Petrucci R E Jr, Levy S B. Active efflux of tetracycline encoded by four genetically different tetracycline resistance determinants in Escherichia coli ［J］. Proc Natl Acad Sci,1980,77(7):3974～3977.

［4］ Van Bambeke F, Balzi E, Tulkens P M. Antibiotic efflux pumps ［J］. Biochem Pharmocol,2000,60(4):457～479.

［5］ Paulsen I T, Brown M H, Skurray R A. Proton-dependent multidrug efflux systems ［J］. Microbiol Rev,1996,60(4):575～608.

［6］ Li X Z, Nikaido H. Efflux-mediated drug resistance in bacteria ［J］. Drugs,2004,64(2):159～204.

［7］ Ghosh A S , Ahamed J , Chauhan K K, et al. Involvement of an efflux system in high-level fluoroquinolone resistance of Shigella dysenteriae ［J］. Biochem Biophys Res Commun,1998,242(1):54～56.

［8］ 楊海燕，段廣才，郗園林. 主動(dòng)外排系統acrAB在志賀菌中分布和表達［J］. 中國公共衛生，2005，21(6)：685～687.

［9］ 朱靜媛，段廣才，張梅喜. 73株志賀菌屬細菌對11種抗生素的耐藥性分析［J］. 河南預防醫學(xué)雜志，2004，15(1)：5～7.

［10］ Borges-Walmsley M I, McKeegan K S, Walmsley R I A. Structure and function of efflux pumps that confer resistance to drugs ［J］. Biochem J,2003,376(Pt2):313～338.

［11］ Rotem D, Sal-man N, Schuldine S. In vitro monomer swapping in EmrE, a multidrug transporter from Escherichia coli, reveals that the oligomer is the functional unit ［J］. Biochemistry,2001,276(51):48243～48249.

［12］ Muth T R, Schuldiner S. A membrane-embedded glutamate is required ligand binding to the multidrug transporter EmrE ［J］. EMBO,2000,19(2):234～240.

［13］ Che M, Geoffrey C. Structure of the multidrug resistance efflux transporter EmrE from Escherichia coli ［J］. PANS,2004,101(9):2852～2857.

［14］ Yerushalmi H, Lebendiker M, Schuldiner S. EmrE, an Escherichia coli 12-kDa multidrug transporter, exchanges toxic cations and H+ and is soluble in organic solvents ［J］. J Biol Chem,1995,270(12):6856～6863.

［15］ Kunihiko N, Akihito Y. Analysis of a complete library of putative drug transporter genes in Escherichia coli ［J］. Bacteriol,2001,183(20):5803～5812.

［16］ 姜泊，張亞歷，周殿元. 分子生物學(xué)常用實(shí)驗方法［M］. 北京：人民軍醫出版社，1996：107～111.

［17］ Pupo G M, Lan R, Reeves P R. Multiple independent origins of Shigella clones of Escherichia coli and convergent evolution of many of their characteristics ［J］. Proc Natl Acad Sci USA 2000,97(19):10567～10572.

［18］ Nelson K E, Clayton R A, Gill S R, et al. Evidence for lateral gene transfer between archaea and bacteria from genome sequence of Thermotoga maritima ［J］. Nature,1999,399(6734):323～329.

［19］ Olendzenski L, Liu L, Zhaxybayeva O, Murphey R, et al. Horizontal transfer of archaeal genes into the Deinococcaceae: detection by molecular and computer-based approaches ［J］. J Mol Evol,2000,51(6):587～599.

［20］ 余澤波，姚成，肖永紅，等. 傷寒沙門(mén)菌主動(dòng)外排多耐藥基因acrB與表達水平研究［J］. 中國抗生素雜志，2005，30(8)：489～493.