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    噬菌蛭弧菌的分離培養研究



    錄入時(shí)間:2010-12-30 9:43:14 來(lái)源:中國論文下載中心

     

    蛭弧菌(Bdellovibro,簡(jiǎn)稱(chēng)BD)是革蘭陰性細菌,并可以通過(guò)裂解其寄生的革蘭陰性細菌維持自身的生長(cháng)發(fā)育[1]。目前,對蛭弧菌的研究主要集中在海水中,對淡水中的研究則很少。本實(shí)驗利用普通蛋白胨培養基和營(yíng)養肉湯兩種培養基,采用描點(diǎn)法[2]、單層培養法[3]及雙層培養法[4],對淡水環(huán)境中的噬菌蛭弧菌樣品進(jìn)行分離培養,以期找出最適合的培養方法及培養基。

      材料與方法

      1.1  原料 

      淡水樣品采自阿哈湖水庫,梯度稀釋至10-3倍。蛋白胨培養基(Pp20)下層板(固體):1 g蛋白胨,15 g瓊脂,1 L蒸餾水;Pp20上層板(半固體):1 g蛋白胨,7 g瓊脂,1 L蒸餾水。營(yíng)養肉湯培養基:蛋白胨5 g,牛肉浸汁3 g,蒸餾水1 L稀釋500倍備用[4]。上層膠:NB×500培養液2 ml,CaCl2·H2O 3.94 mg, MgCl2·6H2O 203.3 mg,瓊脂7 g,加蒸餾水至1 000 ml,調節至pH 8.0;下層膠:NB×500培養液2 ml,CaCl2·H2O 3.94 mg, MgCl2·6H2O 203.3 mg,加蒸餾水至1 000 ml,瓊脂15 g,調節至pH 8.0。宿主菌:副溶血弧菌購于中國科學(xué)院菌種保藏中心。引物:正鏈CAGGCCTAACACATGCAAGTC,負鏈 CGWCACTGAAGGGGCAA[57]。94 ,4 min,94 ,1 min,56 ,1 min,72 ,1 min,72 ,5 min,4 ,∞。

      1.2  方法 

      描點(diǎn)法:將宿主菌分別涂布在蛋白胨培養基(固體)和營(yíng)養肉湯培養基(下層膠)上,用毛細吸管蘸一下樣品,點(diǎn)樣于在培養基不同位置。單層涂布法:將宿主與樣品混合,搖勻后直接涂布在蛋白胨培養基(固體)和營(yíng)養肉湯培養基(下層膠)上。雙層平板培養法:首先將蛋白胨培養基(固體)和營(yíng)養肉湯培養基(下層膠)倒平板、凝固,將0.5 ml宿主,5 ml樣品和5 ml上層膠充分混合,倒在下層膠上。3種方法點(diǎn)樣后30 培養23 d,觀(guān)察噬菌斑的生成并計數。3種培養方法各做3份,分別編號1、2、3。

      1.3  噬菌蛭弧菌的檢測 

      收取生成的噬菌斑,用16SrRNA基因特異性探針作引物進(jìn)行PCR擴增,檢測所得的細菌是否噬菌蛭弧菌。

    結果

      2.1  噬菌斑 

      描點(diǎn)法點(diǎn)樣后培養23 d,并無(wú)明顯的噬菌斑生成。單層涂布法培養23 d后,在營(yíng)養肉湯培養基上看到少數幾個(gè)小噬菌斑生成,噬菌斑形狀不規則(圖1);而在蛋白胨培養基上未見(jiàn)噬菌斑的生成,雙層培養法蛋白胨培養基上有明顯的、大塊的、圓形和不規則斑點(diǎn)(圖2),在營(yíng)養肉湯的雙層培養基上也可看到有圓形,透明的噬菌斑產(chǎn)生,數量較多(圖3,1),但小于雙層蛋白胨培養基上的斑塊。表1  3種培養方法生成的噬菌斑數(略)

      2.2  PCR擴增檢測 

      用16SrRNA基因特異性探針作引物來(lái)進(jìn)行PCR擴增,發(fā)現在蛋白胨培養及營(yíng)養肉湯單層涂布法所得的斑點(diǎn)中所提取的細菌不能得到擴增條帶,而用營(yíng)養肉湯培養的噬菌斑中可以得到蛭弧菌(圖4)。

      討論

    實(shí)驗結果表明,只有用營(yíng)養肉湯雙層培養后的活菌計數才能得到有效數字[8]。用描點(diǎn)法無(wú)法得到噬菌斑,這可能是由于所取樣品量太少,蛭弧菌的濃度太低而無(wú)法形成明顯的噬菌斑。雙層培養法可以有效地分離出蛭弧菌,可能因為雙層培養能給宿主和蛭弧菌一個(gè)更為穩定的生長(cháng)環(huán)境,而且營(yíng)養肉湯培養基的效果更好,可能由于培養基中牛肉浸汁和一些離子存在,不僅能使蛭弧菌得到培養,同時(shí)使宿主菌得到增長(cháng),為蛭孤菌生長(cháng)提供優(yōu)質(zhì)的營(yíng)養環(huán)境,故認為營(yíng)養肉湯雙層培養是培養淡水蛭弧菌的最適方法。

    作者:曾佳  《貴陽(yáng)醫學(xué)院學(xué)報》

    【參考文獻】

        [1]Williams HN, Fakler WAJ, Shay DE . Incidence of marine Bdellovibrios lytic against vibrio parahaemolyticus in chesapeake bay[J]. Appl Environ Microbiol, 1980 (40):970-972.

      [2]沈萍,范秀榮,李廣武.微生物學(xué)實(shí)驗[M].北京:高等教育出版社, 1999:97.

      [3]崔思列,班進(jìn)林,楊潤德,等.蛭弧菌的分離培養及其對病原菌噬菌作用的初步研究[J].河北農業(yè)大學(xué)學(xué)報, 1991(14)76-81

      [4]Koval S F.The search for hunters: Culture-dependent and –Independent methods for analysis of Bdellovibrio and like organisms[J]. Microbiol Monogr(published online), 2006(27)191-211.

      [5]Koval S F. The search for hunters: culture-dependent and independent mothods for analysis of Bdellovibrio and like organisms[J].microbiol Monogr, 2006(10)192-209.

      [6]Pineiro S A, Sahaniuk G E, Romberg E et al.Predation pattern and phylogenetic analysis of Bdellovibrionaceae from the great salt lake, Utah[J]. Curr Mircrobiol, 2004 (48):113-117.

      [7]Pineiro S A, Stine O C, Chauhan A, et al.Global survey of diversity among environmental saltwater bacteriovoracaceae[J]. Environ Microbiol, 2007 (9):2441-2450.

      [8]劉志恒.現代微生物學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社, 2002:413.

     

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