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    耐氨芐西林流感嗜血桿菌產(chǎn)β-內酰胺酶機制研究



    錄入時(shí)間:2010-12-13 9:37:38 來(lái)源:中國論文下載中心

     

    摘 要 目的:探討耐氨芐西林的流感嗜血桿菌產(chǎn)生β-內酰胺酶的機制。方法:對臨床分離的112株流感嗜血桿菌耐藥菌用紙片法作β-內酰胺酶測定,用PCR法檢測產(chǎn)酶流感嗜血桿菌中的β-內酰胺酶基因的存在。結果:紙片法測得產(chǎn)酶菌株32株,產(chǎn)酶率28.6(32/112);32株產(chǎn)酶菌中PCR法測β-內酰胺酶基因陽(yáng)性菌株29株,陽(yáng)性率為90.6%(29/32),其中質(zhì)粒DNA模板組陽(yáng)性為25株,基因組DNA模板組陽(yáng)性為4例。結論:(1)流感嗜血桿菌耐氨芐西林主要由質(zhì)粒介導產(chǎn)生β-內酰胺酶所造成。(2)PCR法是研究流感嗜血桿菌是否攜帶β-內酰胺酶基因及該基因所在位置的簡(jiǎn)便而有效的方法。


      自1972年第一次發(fā)現流感嗜血桿菌因產(chǎn)β-內酰胺酶而致耐氨芐西林以來(lái)[1],國外對耐氨芐西林流感嗜血桿菌的耐藥機制以及產(chǎn)β-內酰胺酶的分子基礎研究,呈逐年增加趨勢。1978Bryan等[2]首次報道了質(zhì)粒介導產(chǎn)生β-內酰胺酶的流感嗜血桿菌。此后,圍繞流感嗜血桿菌中的質(zhì)粒編碼β-內酰胺酶及其與耐氨芐西林的關(guān)系進(jìn)行了許多研究。我國由于流感嗜血桿菌的分離率較低,對此問(wèn)題的研究一直沒(méi)有深入。本文作者在本實(shí)驗室成功提高流感嗜血桿菌分離率的基礎上[3,4],分離獲得36株耐氨芐西林的流感嗜血桿菌,用紙片法測定它們產(chǎn)β-內酰胺酶的情況后,用PCR方法對產(chǎn)酶菌中β-內酰胺酶基因的存在與否進(jìn)行了檢測,對耐氨芐西林的流感嗜血桿菌產(chǎn)生β-內酰胺酶機制作了初步分析。


      1 材料和方法


      1.1 流感嗜血桿菌的分離培養 收集痰或咽拭子標本,于1 h內接種于改良的哥倫比亞巧克力瓊脂平板中,置5% CO2孵箱,37孵育1824 h,對疑似流感嗜血桿菌的菌落分別于血瓊脂和營(yíng)養瓊脂平板上作衛星試驗,僅在血瓊脂平板上衛星試驗陽(yáng)性者為流感嗜血桿菌。用常規的紙片法(K-B法)對每個(gè)菌株作體外藥物敏感試驗,根據美國NCCLS標準判讀藥敏結果。從平板上挑取耐氨芐西林的單菌落接種于含3 ml液體HTM培養液的試管中,于5% CO2孵箱37孵育培養過(guò)夜,離心收集菌體用于質(zhì)粒制備等后續實(shí)驗。


      1.2 紙片法測定β-內酰胺酶 將流感嗜血桿菌培養物經(jīng)超聲裂解后直接涂布于β-內酰胺酶紙片上,在15 min內變紅者為陽(yáng)性。超聲儀為Branson Sonifier 250,β-內酰胺酶紙片購自Oxid公司。


      1.3 PCR法檢測β-內酰胺酶基因


      1.3.1 PCR引物 針對β-內酰胺酶結構基因的PCR引物由本校分子遺傳學(xué)開(kāi)放實(shí)驗室用PCGENE軟件PCRPLAN程序設計,上海生工生物工程公司協(xié)助合成。引物序列為:上游引物:5′TGGGTGCACGAGTGGGTTAC3′,下游引物:5′TTATCCGCCTCCATCCAGTC3′。


      1.3.2 PCR反應條件 用PE2400DNA擴增儀,50 μl PCR反應體系中含有模板DNA 1 μl、上游下游引物各1 μl(濃度為25 μmol/L),10×緩沖液5 μl,dNTP混合物(10 mmol/L4 μl,并用ddH2O補足至50 μlMg2+的終濃度為1.5 mmol/L),以94 3 min→(94 1 min→55 1 min→72 1 min,循環(huán)30)→72 7 min→4保溫。PCR反應后取10 μl產(chǎn)物點(diǎn)樣,進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳并拍照。


      1.3.3 PCR模板的制備 細菌質(zhì)粒DNA用常規堿裂解法分離、RNase Ⅰ消化、酚/氯仿抽提純化[3];細菌基因組DNA用菌體凍融法制備:取少量細菌于1.5 ml塑料離心管中,用蒸餾水重懸,加入少量溶菌酶于37水浴5 min,放入液氮迅速冰凍5 min,取出后立即放入37水箱融化5 min,重復凍融3次,室溫下1×104 r/min離心5 min,吸取上清液到新的離心管,加入1.5倍體積的無(wú)水乙醇于-20沉淀30 min,1.5×104 r/min離心沉淀,用10 μl TE溶解后備用。
      2 結 果
      2.1 流感嗜血桿菌的分離 自199710月至199811,從我院呼吸內科及耳鼻咽喉科呼吸道感染患者中收集634份痰及咽拭子標本,分離鑒定出112株流感嗜血桿菌,其中,藥敏試驗證明為氨芐西林耐藥的36株。
      2.2 β-內酰胺酶檢測結果 36株耐氨芐西林流感嗜血桿菌中,紙片法測得產(chǎn)酶菌株32株,耐藥菌中產(chǎn)酶率88.9%(32/36)。
      2.3 PCR法檢測β-內酰胺酶基因結果 用針對β-內酰胺酶基因的上游和下游特異性引物擴增后,陽(yáng)性條帶大小為486 bp,擴增結果與預期值相同。32株產(chǎn)酶菌中PCR陽(yáng)性菌株29株,陽(yáng)性率為90.6%。其中以質(zhì)粒為模板PCR陽(yáng)性菌株25株,占產(chǎn)酶菌的78.1%25/32);對7株質(zhì)粒DNA模板PCR陰性的菌株,以基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴增,結果有4株為陽(yáng)性。
      3 討 論
      國外對耐氨芐西林流感嗜血桿菌產(chǎn)β-內酰胺酶的分子機制研究,主要采用的方法是在大量培養細菌的基礎上,通過(guò)CsCl密度梯度超離心等方法獲取較大量的質(zhì)粒DNA,進(jìn)行限制性?xún)惹忻该盖蟹治、瓊脂糖凝膠電泳、質(zhì)粒轉化試驗等,大致分析質(zhì)粒DNA的大小、結構,驗證質(zhì)粒介導的耐氨芐西林表型等,獲得質(zhì)粒介導的產(chǎn)酶及其與耐氨芐西林藥物的關(guān)系等的可靠證據[6]。但是,自然狀態(tài)的流感嗜血桿菌菌株中所攜帶的野生型質(zhì)粒的大小、結構、拷貝數差異非常大,對細菌培養的數量、質(zhì)粒抽提純化的方法提出了很高的要求,其結構的變異也造成電泳、酶切分析等方法難以做到精確分析質(zhì)粒的結構。另外,野生型質(zhì)粒的分子量通常較大,常用的轉化實(shí)驗成功率不高;再加上野生型菌株中所含質(zhì)粒結構復雜,而這些方法都未能直接鑒定質(zhì)粒DNA中是否攜帶有編碼β-內酰胺酶的基因。


      鑒于上述情況,本實(shí)驗設計了針對β-內酰胺酶基因的特異性引物,對所分離獲得的產(chǎn)β-內酰胺酶的耐氨芐西林流感嗜血桿菌中該酶編碼基因的存在情況進(jìn)行了直接的PCR檢測。結果發(fā)現,32株產(chǎn)β-內酰胺酶的流感嗜血桿菌,用可靠的堿變性法獲取的質(zhì)粒DNA為模板進(jìn)行PCR檢測,陽(yáng)性率達到78.1%,而7株質(zhì)粒DNA模板PCR陰性的產(chǎn)酶菌株中,有4株在以染色體DNA樣品為模板進(jìn)行的PCR反應中表現陽(yáng)性。這些結果提示耐氨芐西林的流感嗜血桿菌編碼β-內酰胺酶的基因主要存在于所攜帶的質(zhì)粒DNA上,而有少部分酶基因位于染色體DNA上,這與文獻報道的結論一致。從方法上看,本研究所采用的PCR法直接檢測耐氨芐西林流感嗜血桿菌中β-內酰胺酶基因的方法,特異性高,標本產(chǎn)β-內酰胺酶的核苷酸序列具有高度的特異性;敏感性高,PCR方法可將待測DNA片斷的量擴大百萬(wàn)倍,可以檢測細菌含量極微的標本;既可以測質(zhì)粒模板β-內酰胺酶基因,也可以測染色體模板β-內酰胺酶基因;如果配合PCR產(chǎn)物的序列測定等,還可用于β-內酰胺酶分類(lèi)、基因序列分析、分子流行病學(xué)調查等。但PCR方法有假陽(yáng)性的情況,如β-內酰胺酶基因結構出現變異但未影響PCR引物結合位點(diǎn)時(shí),可能存在PCR陽(yáng)性但基因并無(wú)活性的情況。從理論上講,能產(chǎn)生β-內酰胺酶的菌株均應有相應的編碼基因存在,但本實(shí)驗中有3PCR陰性,可能的原因是模板制備過(guò)程以及PCR反應過(guò)程所造成的假陰性所致。雖然國外有用PCR方法檢測流感嗜血桿菌菌株、β-內酰胺酶基因及其分類(lèi)的報道[7],國內袁藝等[8]曾用PCR法檢測流感嗜血桿菌菌株,但對產(chǎn)β-內酰胺酶的耐氨芐西林流感嗜血桿菌,分別以其質(zhì)粒DNA和染色體DNA為模板,用PCR方法測β-內酰胺酶基因,研究其產(chǎn)酶和耐藥機制的,國內外均未見(jiàn)報道。

    參考文獻
      1 Gunn BA, Woodall JB, Jones JF, et al. Ampicillin-resistant haemophilus influenzaeJ. Lancet. 1974,2(7884): 845
      2 Bryan  LE. Transferable chloramphenicol and ampicillin resistance in a strain of Haemophilus influenzaeJ. Antimicrob Agents Chemother, 1978,14(1):154
      3 修清玉,賴(lài)國祥,王桂芳,等. 改良哥倫比亞巧克力培養基分離流感嗜血桿菌[J. 中華醫學(xué)檢驗雜志, 1998,21(3):161
      4 方 正,羅文侗,修清玉,等,流感嗜血桿菌下呼吸道感染的實(shí)驗與臨床研究[J. 中華結核與呼吸雜志, 1999,22(4):208
      5 薩姆布魯克 J, 弗里奇 EF, 曼尼阿蒂斯 T. 金冬雁,黎孟楓 譯. 分子克隆實(shí)驗指南. 2版[M. 北京:科學(xué)出版社,1992.
    1924
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      8 袁 藝,盧 競,郭章溉,等. 聚合酶鏈反應技術(shù)檢測流感嗜血桿菌[J. 中華微生物學(xué)與免疫學(xué)雜志, 1997,17(1):25

     

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