摘 要 目的:闡明波動(dòng)條件下細菌自身代謝與周?chē)h(huán)境變化的關(guān)系。方法:通過(guò)Lowry法檢測蛋白質(zhì)含量,鄰甲苯胺法檢測葡萄糖含量,聚鄰苯二胺pH修飾電極檢測pH值來(lái)觀(guān)察環(huán)境條件的變化;以顯色法檢測波動(dòng)環(huán)境內、外細菌的TTC-脫氫酶活性。結果:細菌群體在靠近中央位置形成封閉環(huán)境,在遠離中央位置出現濃度梯度現象。伴隨著(zhù)封閉環(huán)境的形成,細菌代謝近乎停止;伴隨著(zhù)濃度梯度的出現,細菌代謝趨于旺盛。結論:細菌的波狀生長(cháng)是生物耗散與生態(tài)環(huán)境相統一的具體表現。
關(guān)鍵詞:波動(dòng)生長(cháng);細菌代謝;環(huán)境變化
細菌的生長(cháng)代謝是開(kāi)放系統條件下的生命活動(dòng)過(guò)程,它一方面導致著(zhù)周?chē)h(huán)境條件的變化,另一方面又受到環(huán)境條件變化的制約。許多學(xué)者把環(huán)境因素納入了微生物學(xué)研究的范疇,運用環(huán)境條件變化與細菌生長(cháng)代謝改變的關(guān)系來(lái)預測菌群間相互作用的結果[1]、食品中細菌的生長(cháng)狀況[2]并建立預測模型[3]。不同環(huán)境條件下細菌的生長(cháng)方式及生理狀態(tài)都有所不同,這在細菌生長(cháng)的群體、周期和波動(dòng)變化中可得以體現[4]。目前,對細菌波動(dòng)生長(cháng)過(guò)程的研究主要集中在對細自身變化的探討上,對環(huán)境因素變化與細菌自身變化的關(guān)系研究得較少。研究細菌波動(dòng)過(guò)程中環(huán)境因素的菌變化及細菌代謝活性的變化,有助于對細菌波動(dòng)發(fā)生機制的解釋。
本實(shí)驗以變形桿菌波動(dòng)模型為研究對象,定量檢測了波動(dòng)模型形成過(guò)程中不同波動(dòng)環(huán)中的營(yíng)養物質(zhì)含量,酸堿堆積情況及細菌代謝活性,以期為細菌波動(dòng)的發(fā)生機制提供環(huán)境因素及細菌代謝方面的實(shí)驗依據。
1 材料與方法
1.1 菌種
奇異變形桿菌(P.mirabilis),由生物波研究中心保存。
1.2 波動(dòng)培養基
按照劉俊康等[5]報道的方法制備。
1.3 聚鄰苯二胺pH修飾電極
由本;瘜W(xué)教研室提供。
1.4 細菌波動(dòng)生長(cháng)過(guò)程中各環(huán)蛋白質(zhì)及葡萄糖含量的測定
每次用5塊波動(dòng)Ⅰ號平板,重復4次。每塊平板中心點(diǎn)種奇異變形桿菌,
1.5 細菌波動(dòng)生長(cháng)過(guò)程中不同區域pH值測定
同上法波動(dòng)培養24h后,自中心環(huán)向外,每環(huán)取3點(diǎn),用聚鄰苯二胺pH修飾電極測定各環(huán)的pH。
1.6 TTC-脫氫酶標準曲線(xiàn)的制作
按牛志卿等[6]提供的方法,用直線(xiàn)回歸方程表示。
1.7 細菌波動(dòng)過(guò)程中各環(huán)TTC-脫氫酶活性的測定
同上法波動(dòng)培養24h后,每環(huán)取定量細菌振蕩混勻于5ml蒸餾水中,然后用5ml三氯甲烷進(jìn)行萃取,其余步驟同標準曲線(xiàn)制作。
1.8 各環(huán)細菌波動(dòng)環(huán)境外的TTC-脫氫酶活性測定
用未加氯化三苯基四氮唑(TTC)的波動(dòng)Ⅰ號培養基同上法波動(dòng)培養24h后,每環(huán)取定量細菌配成1ml菌液,各加入Tris-HCl緩沖液2ml和TTC-葡萄糖標準溶液2ml,置于(37±1)°C恒溫培養箱中,反應4h顯色后,其余步驟同標準曲線(xiàn)制作。
1.9 統計學(xué)處理
實(shí)驗數據均以
2 結果
2.1 細菌波動(dòng)生長(cháng)過(guò)程中各環(huán)蛋白質(zhì)含量、葡萄糖含量、pH值及兩兩間差異的檢驗
結果見(jiàn)表1,波動(dòng)的前6環(huán)之間數值比較接近,后4環(huán)出現較大變化,經(jīng)Newman-Keuls法對各組數據進(jìn)行了多重比較,結果顯示,在α=0.05水平下,蛋白質(zhì)含量、葡萄糖含量及pH值在細菌波動(dòng)的前6環(huán)之間差異均不顯著(zhù),在后4環(huán)之間及后4環(huán)與前6環(huán)之間差異均顯著(zhù)。
表1 各波動(dòng)環(huán)中蛋白質(zhì)、葡萄糖含量及pH值(
tab1 Protein,glucose content and pH of different bacterial wave loop(
|
Bacterial wave loop | |||||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 | |
Protein(ρB/g.L-1) |
3.990±0.025 |
3.884±0.018 |
3.972±0.017 |
3.932±0.052 |
3.926±0.058 |
4.002±0.017 |
5.024±0.058 |
6.372±0.017 |
7.828±0.067 |
8.968±0.037 |
Glucose(ρB/g.L-1) |
0.226±0.008 |
0.248±0.002 |
0.238±0.002 |
0.254±0.004 |
0.254±0.001 |
0.364±0.001 |
0.470±0.003 |
0.588±0.007 |
0.754±0.001 |
0.863±0.004 |
pH |
8.580±0.007 |
8.0640±0.003 |
8.610±0.013 |
8.440±0.008 |
8.460±0.003 |
8.520±0.002 |
8.260±0.003 |
7.940±0.003 |
7.660±0.003 |
7.440±0.003 |
2.2 細菌波動(dòng)過(guò)程中各細菌環(huán)的TTC-脫氫酶活性
結果見(jiàn)表2。經(jīng)Newman-Keuls法對同一環(huán)不同時(shí)間TTC-脫氫酶催化反應的TTC量進(jìn)行兩兩間比較,結果顯示,在α=0.05的水平下,前6環(huán)在不同時(shí)間的TTC消耗量差異不顯著(zhù),后4環(huán)在不同時(shí)間的TTC消耗量差異顯著(zhù)。 表2 不同波動(dòng)環(huán)中的細菌TTC-脫氫酶活性(mg,
tab2 Bacterial TTC-dehyogenase activity in different wave loop(mg,
|
The reduction quantiy of TTC in different bacterial wave loop | |||||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 | |
1 h |
0.0406±0.0013 |
0.228±0.0047 |
0.0438±0.0017 |
0.0210±0.0035 |
0.0454±0.0048 |
0.0232±0.0037 |
0.0381±0.0025 |
0.017±0.0016 |
0.0394±0.0013 |
0.0156±0.0013 |
2 h |
0.0414±0.0016 |
0.0232±0.0028 |
0.0426±0.0024 |
0.0231±0.0019 |
0.0466±0.0027 |
0.0228±0.0022 |
0.0408±0.0034* |
0.0204±0.0023* |
0.0412±0.0007* |
0.0173±0.0024* |
3 h |
0.0409±0.0032 |
0.0229±0.0016 |
0.0431±0.0017 |
0.0224±0.0022 |
0.0457±0.0043 |
0.0234±0.0025 |
0.0433±0.0021*△ |
0.0226±0.0018*△ |
0.0442±0.0027*△ |
0.0212±0.0032*△ |
2.3 波動(dòng)環(huán)境外各環(huán)細菌的TTC-脫氫酶活性
結果見(jiàn)表3。用Newman-Keuls法對數據進(jìn)行了兩兩比較,在α=0.05的水平下,兩兩間差異均不顯著(zhù)。
表3 波動(dòng)環(huán)境外各環(huán)細菌的TTC-脫氫酶活性(mg,
tab3 Bacterial TTC-dehyogenase activity in different wave loop outside of the wave environment(mg,
Bacterial wave loop |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
Reduction quantity of TTC |
0.0388±0.0017 |
0.0368±0.0025 |
0.0374±0.0008 |
0.0390±0.0018 |
0.0374±0.0017 |
0.0364±0.0020 |
0.0404±0.0020 |
0.0380±0.0010 |
0.4000±0.0009 |
0.0360±0.0010 |
3 討論 細菌的生命活動(dòng)在不同的環(huán)境條件下發(fā)生潛-生序適應性變化,宏觀(guān)上表現為不同的生長(cháng)方式,Rascle等[7]建立了細菌的趨化性生長(cháng)模型,徐啟旺等[4]也建立了細菌波動(dòng)生長(cháng)模型并揭示出細菌的波狀生長(cháng)方式可能是一種普遍現象。實(shí)驗研究已經(jīng)發(fā)現細菌在波狀生長(cháng)過(guò)程中會(huì )發(fā)生短桿菌與長(cháng)條菌之間的潛-生序交替變化,兩者在細胞結構及抵抗力方面存在著(zhù)一些差別[8],這些都初步提示細菌在潛-生序微觀(guān)變化基礎上產(chǎn)生的宏觀(guān)波動(dòng)可能是細菌的一種自我保護和生存機制,本實(shí)驗選取培養基中蛋白質(zhì)和葡萄糖含量作為衡量環(huán)境營(yíng)養狀況的指標,以pH值作為衡量環(huán)境酸堿堆積情況的指標,通過(guò)測定細菌的TTC-脫氫酶活性來(lái)反映細菌的代謝活性,將這些指標相結合,有助于精細分析周?chē)h(huán)境壓力與細菌自身變化間的相互作用。
表1的實(shí)驗結果顯示,隨著(zhù)細菌由中心向外波動(dòng)的延伸,培養基中營(yíng)養物質(zhì)的消耗情況和酸堿物質(zhì)的堆積情況在前6環(huán)中基本上是形成了一個(gè)平臺,在最后4環(huán)中才逐漸形成了一個(gè)減少或增加的梯度。經(jīng)單因素方差分析結果顯示,前6環(huán)中各環(huán)之間營(yíng)養物質(zhì)含量及環(huán)境pH值差異不顯著(zhù),后4環(huán)之間的差異及各環(huán)與標準對照之間的差異均顯著(zhù)(P<0.05)。從實(shí)驗結果中可看出,前6環(huán)中營(yíng)養物質(zhì)含量甚少,且相互間無(wú)顯著(zhù)差異,表明這6環(huán)中已幾乎形成了一個(gè)封閉環(huán)境,如果將這個(gè)封閉環(huán)境中的所有細菌都移去,細菌波動(dòng)仍然能夠繼續延伸,這表明封閉環(huán)境內由于營(yíng)養物質(zhì)的耗散,細菌生命活動(dòng)極度減弱,對細菌波動(dòng)的延續已不起主導作用;而后4環(huán)中環(huán)境的營(yíng)養物質(zhì)還存在一定的梯度,即還存在著(zhù)一個(gè)非平衡環(huán)境,因此當封閉環(huán)境中的細菌移去后,由于非平衡動(dòng)力的存在,細菌波動(dòng)仍然能夠延續下去。
為了進(jìn)一步觀(guān)察封閉環(huán)境及非平衡環(huán)境對細菌生命活動(dòng)的影響,我們還測定了各環(huán)中細菌的TTC-脫氫酶活性及各環(huán)細菌移出各自的波動(dòng)環(huán)境后的TTC-脫氫酶活性,從第9環(huán)(即第5個(gè)紅環(huán))初步形成開(kāi)始到第9環(huán)完全形成的3h中,每隔1h測定一次各環(huán)細菌的TTC-脫氫酶活性,結果顯示第5環(huán)以前的各環(huán)細菌TTC-脫氫酶活性幾乎沒(méi)變化,而第6環(huán)以后的細菌TTC-脫氫酶活性均逐漸有所增加。但我們把中心環(huán)直至最外環(huán)的細菌均定量取到試管中測定它們各自的TTC-脫氫酶活性時(shí),結果則顯示各環(huán)間相差不顯著(zhù)(P>0.05)。這些都強烈地提示在細菌波動(dòng)過(guò)程中,一旦形成了封閉環(huán)境,細菌生長(cháng)便近乎停止,留下來(lái)的是生命活動(dòng)的載體和殘跡,當進(jìn)入一個(gè)開(kāi)放系統后,波動(dòng)又沿著(zhù)單一方向進(jìn)行下去。
細菌波動(dòng)是生物波的一個(gè)簡(jiǎn)單模型,本實(shí)驗結合一些先前研究結果從一個(gè)方面提示,細菌波動(dòng)過(guò)程是一個(gè)生物耗散與生態(tài)環(huán)境相統一的過(guò)程。而兩者的因果關(guān)系及細菌波動(dòng)生長(cháng)過(guò)程的調控機制,尚有待進(jìn)一步的研究。
參考文獻
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