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    病毒RNA傳統提取方法



    錄入時(shí)間:2010-10-28 10:35:51 來(lái)源:生命經(jīng)緯

    一、細胞的裂解

    1、單層細胞的裂解

    a)吸出培養液,以7ml用冰預冷的無(wú)鈣鎂離子磷酸緩沖鹽溶液PBS沖洗細胞培養皿內的單層細胞,重復1次,將平板置于冰上直至所有單層細胞沖洗完畢。也可將平板放在一塊鋁板上,再將鋁板置于冰盤(pán)上。

    b)直徑為90mm的培養皿需加0.5ml RNA提取緩沖液,并使之遍布整個(gè)平板的表面。(RNA提取緩沖注液配方:0.14mol/L NaCl,1.5mmol/L MgCl2,10mmol/L Tris.Cl(pH8.6),0.5NP-40,1mmol/L二硫蘇糖醇(DTT),100單位/ml RNA酶抑制劑或20mmol/L氧釩核糖核苷復合物。)

    c)加0.5ml蛋白酶消化緩沖液,用刮棒混勻粘稠狀裂解物并將其刮到平板的邊緣。(蛋白酶消化緩沖液配方:0.2mol/L Tris.Cl(pH8.0),25mmol/L EDTA(pH8.0),0.3mol/L NaCl,2 SDS

    d)用裝有21號針頭的皮下注射器抽吸細胞裂解物,再將其注入聚丙烯管內。重復34次,剪切DNA。

    e)加蛋白酶K至終濃度為200μg/ml,充分混勻后置于37溫育30分鐘。蛋白酶K以貯存液的形式保存,貯存液為20mg/ml蛋白K溶液。

    2、懸浮培養的細胞或組織單細胞懸液的裂解

    a)于42000g離心5分鐘收集細胞,以10倍體積用冰預冷的無(wú)鈣鎂離子磷酸緩沖液懸沉淀,洗滌細胞3次,每次均用大口徑的吸管輕輕吹打細胞沉淀,使其徹底分散。

    b)估計細胞沉淀的體積,用10-20倍體積的RNA提取緩沖液重懸之。

    c)加入與步驟b)所加RNA提取緩沖液體相同的蛋白酶消化緩沖液,用振蕩器迅速混勻。用裝有21號針頭的皮下注射器抽吸細胞裂解物,再將其注入聚丙烯管內。重復34次,剪切DNA。

    d)加蛋白酶K至終濃度為200μg/ml,充分混勻后置于37溫育30分鐘。蛋白酶K以貯存的形式保存,貯存液為20μg/ml蛋白酶K水溶液。

    二、提取步驟

    1、用等體積酚:氯仿抽提1次,以去除蛋白質(zhì)。

    2、用吊桶式轉頭于室溫以5000g離心10分鐘使水相與有機相分相, 將水相吸至一個(gè)新的離心管內,加2.5倍體積用冰乙醇,充分混勻, 0放置1小時(shí)。

    3、于45000g離心10分鐘沉淀RNA,棄上清,用含0.1mol/L乙酸鈉(pH5.2)的70%乙酸洗滌沉淀,用自動(dòng)微量移液器盡可能將乙醇吸盡, 隨后于室溫放置幾分鐘,晾干沉淀。切勿抽干沉淀,因為干的核酸沉淀很難溶解。

    4、每個(gè)直徑為90mm的培養皿或每107細胞加200μl 50mmol/L Tris.Cl(pH7.8)1mmol/L EDTA(pH8.0)溶液重溶沉淀。

    5、分別按10mmol/L0.1mmol/L的深度加MgCl2和二硫蘇糖醇(DTT),然后分別按1000單位/10mmol/L 的終深度加臺盤(pán)RNA酶抑制劑或氧釩核苷復合物。

    6、加入無(wú)RNA酶的胰DNAI至終濃度為2μg/ml,混勻,于37溫育60分鐘。

    7、分別按10mmol/L0.2%的終濃度加EDTASDS。

    8、用等體積酚:氯仿抽提1次。

    9、于室溫以5000g離心10分鐘使水相與有機相分相, 將水相吸至另一個(gè)離心管內,加3mol/L乙酸鈉(pH5.2)至終濃度為0.3mol/L,加2.5倍體積用冰預次的乙醇,充分混勻,冰浴放置2小時(shí)。

    10、用微量離心機于412 000g離心5分鐘沉淀RNA。

    11、吸出所有的乙醇,將打開(kāi)管蓋的離心管在實(shí)驗臺放置幾分鐘,讓最后殘存的痕量乙醇揮發(fā)干凈。

    12、用200μl TEpH7.6)重溶沉淀,加500μl乙醇,于-70 貯存備用;厥DNA時(shí),只須取出1小份貯存液,加入3mol/L乙酸鈉(pH5.2 )至終濃度為0.3mol/L,充分混勻,用微量離心機于412 000g離心5分鐘即可。

    三、注意事項

    1、測定最終所得溶液的OD260值可以確定RNA的濃度。取10μl乙醇/TE混合液離心沉淀RNA,以400水重溶,測定OD260值,OD2601RNA溶液每毫升約含40μg RNA。

    2、如果需要,可用oligo(dT)-纖維素層析法從所制備的細胞總RNA中純化無(wú)寡脫氧核糖核苷酸污染的mRNA或購買(mǎi)試劑盒進(jìn)行mRNA的純化。

    3、某些情況下(例如從感染了DNA病毒或用DNA轉染的細胞中制備RNA時(shí)),必須從細胞總RNA中去除寡脫氧核核苷酸。否則,當用這種RNA構建cDNA庫或進(jìn)行引物延伸反應時(shí)應會(huì )出問(wèn)題,反轉錄過(guò)程中法染的模板DNA片段可能會(huì )與RNA雜交而充當引物,從而導致物定mRNA5'末端定位的錯誤或產(chǎn)生截短的cDNA克隆。

    a)步驟12后,加200μl 3mol/L乙酸鈉(pH5.2),用自動(dòng)微量移液器反復吹吸,以重懸核酸沉淀,將懸浮液移至另一個(gè)滅菌的微量離心管內。

    b)用微量離心機于室溫以12,000g離心10分鐘,RNA沉于管底,而絕大部分寡脫氧核糖核苷酸仍在上清中。

    c)棄上清液,用200μl TEpH7.6)重溶沉淀。加入20μl 3mol/L乙酸鈉(pH5.2),分混勻,加入550μl用冰預冷的乙醇;靹蛉芤,在冰上驟冷30分鐘。用微量離心機于412,000g離心10分鐘,以回收RNA。小心吸出上清。

    d)棄上清液,用300μl TEpH7.6)重溶沉淀,加1ml乙醇,-70貯存備用。

    回收RNA時(shí),只需取出1小份貯存液,加3mol乙酸鈉(pH5.2)至終濃度為0.3mol/L充分混勻,用微量離心機于412 000g離心5分鐘即可。如需去除氧釩核糖核苷復合物,用含0.1%羥喹啉的苯酚[0.01mol/L Tris.Cl(pH7.8)平衡]RNA終溶液抽提數次即可。

     

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