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    病毒顆粒在QBI-293A細胞中的大量擴增



    錄入時(shí)間:2009-8-17 11:48:47 來(lái)源:青島海博

      一旦重組病毒已被純化和鑒定,即可在QBI-293A細胞中進(jìn)行大量擴增。本手冊提供了遞增培養規模和腺病毒感染周期的基本方法,按這一方法最終得到的病毒量約為3×1011~3×1012。由于一個(gè)細胞中所含的病毒顆粒為1000~10000,因此1L培養細胞可得到約5×1012病毒顆粒。如果要把病毒用氯化銫梯度離心純化,則必須至少3×108的細胞,這樣才能正確分辨出病毒帶。對于蛋白表達,則根據需要可在任何一步擴增步驟中停止,離心沉淀細胞后按照適當的操作方法進(jìn)行蛋白抽提(根據蛋白類(lèi)型的不同抽提上清或細胞沉淀)。為優(yōu)化時(shí)間進(jìn)程,每個(gè)感染周期必須與下一次細胞擴增培養同步。如果由于各種原因不能同步,則必須將病毒凍存,直至下一次細胞培養開(kāi)始后再融化病毒。注意每次擴增都將會(huì )剩下一些病毒,這些病毒先不必丟棄,以便下一步擴增失敗時(shí)備用。每次擴增最好都用最低代的病毒顆粒,這樣產(chǎn)生突變型病毒的可能性會(huì )大大降低。
     
    操作步驟:
    1. 在100mm培養皿或75cm2培養瓶中加入10ml DMEM5%培養5×106 QBI-293A細胞。
    2. 取0.5ul首次擴增的病毒保存液,加入DMEM5%至1ml,混勻,這樣稀釋?xiě)玫降腗OI值約為5。 
    3. 移去培養液,小心加入病毒混合液,切勿破壞細胞單層,十字形慢慢晃動(dòng)3次,37℃ CO2孵箱中培養90分鐘。 
    4. 加入9ml DMEM5%。
    5. 再培養72小時(shí),這時(shí)在10ml溶液中大約有5×109~5×1010個(gè)病毒顆粒,進(jìn)行MOI測定以估計病毒顆粒(5.3)。   
    如果此時(shí)得到的病毒量已足夠,可立即進(jìn)行病毒滴度測定(5.8)。收集細胞,600×g離心5分鐘沉淀細胞,去上清后加入最小體積(一般為原始體積的1/10即1ml)病毒保存溶液重懸細胞。-20℃/37℃凍融3次,臺式離心機上以最大速率離心去除細胞碎片,收集上清,然后按5.8進(jìn)行病毒滴定。
     
    6. -20℃/37℃凍融3次。
    7. 轉入15ml無(wú)菌離心管中,臺式離心機上以最大速率離心10分鐘,收集上清凍存于-20℃或-80℃。
    8. 3個(gè)175cm2培養瓶中各加入107 QBI-293A細胞進(jìn)行培養。
    9. 將3ml細胞裂解液上清加入12ml DMEM5%中,混勻。移去細胞培養液,每瓶小心加入5ml混合液,十字形慢慢晃動(dòng)混勻3次,37℃CO2孵箱中培
    養90分鐘。此時(shí)MOI值約為25。
    10. 加入DMEM5%至30ml。
    11. 再培養48~72小時(shí)。此時(shí)10ml培養液病毒量約為3×1010~3×1011。若需要,進(jìn)行MOI測定(5.3)以估計病毒滴度。此時(shí)如果病毒量已足夠,則可立即進(jìn)入病毒滴定步驟(5.8)。600×g離心5分鐘收集細胞,棄上清,加入1/10原始體積的溶液重懸細胞。-20℃/37℃凍融3次,臺式離心機上以最大速率沉淀細胞碎片,收集上清,按5.8章中所述進(jìn)行病毒滴定。
    12. 移入50ml離心管中,臺式離心機上最大速率離心10分鐘,取出上清保存。 S1 3ZdaHiJ 
    13. 30瓶175 cm2培養瓶中每瓶各加入107 QBI-293A細胞。
    14. 將45ml細胞裂解液上清加入105ml DMEM5%混勻,從培養瓶中移去培養液,加入5ml混合液感染細胞,十字形緩慢晃動(dòng)3次混勻,37℃培養90分鐘。此時(shí)MOI值約為25。
    15. 加入DMEM5%至30ml/瓶。
    16. 再培養48-72小時(shí),此時(shí)約有3×1011~3×1012個(gè)病毒。若需要,進(jìn)行MOI測定估計病毒滴度。如果要收集病毒顆粒,先收集被感染細胞,然后重懸在5ml DMEM5%中。-20℃/37℃凍融3次,離心沉淀細胞碎片。此時(shí)5ml DMEM5%中3×1011~3×1012個(gè)病毒顆粒,濃度為6×1010~6×1011vp/ml。然后按5.8章中所述滴定病毒儲存液,或者用標準的氯化銫密度梯度離心法純化病毒。在109細胞中擴增病毒可獲得大量病毒保存液,而在1010細胞中擴增則有一定技術(shù)性。切勿將擴增后的病毒保存液再用來(lái)感染細胞,因這會(huì )大大增加RCA產(chǎn)生量。有時(shí)不得不使用純化空斑以最大可能降低RCA產(chǎn)量。如果已沒(méi)有純化的空斑,那么就不得不重新空斑純化重組病毒,鑒定克隆后再進(jìn)行擴增。如果需要大于擴增4輪后的病毒量,注意請用早期的病毒作為擴增源。比如,用第2代病毒產(chǎn)生第3代病毒。如果沒(méi)有第2代病毒,那么必須用第1代病毒來(lái)產(chǎn)生新的第2代病毒。按這個(gè)原則進(jìn)行擴增可使RCA水平盡可能低。如果用于表達蛋白,則可以收集細胞后根據蛋白特點(diǎn)選擇適當方法抽提蛋白。細胞沉淀中一般可提取1-5mg蛋白,建議在小規模擴增后先測定感染后抽提蛋白的最佳時(shí)間,然后再大量擴增蛋白。 
    表5:腺病毒擴增
             第一代 第二代 第三代 第四代 21D c}GlEH 
    每瓶細胞數 1×105 5×106 1×107 1×107
    培養瓶大小 
    (cm2)   75 175 175
    培養瓶數 24孔板1孔 1 3 30   
    感染來(lái)源 稀釋的空斑 首次擴增后的病毒保存液 第二代病毒 第三代病毒
    每瓶接種量 0.1 mL 0.5 mL或 n d 
    2.5×107   1 mL 1.5 mL 
    總培養體積 1 mL 10 mL 90 mL 900 mL 
    MOI 0.01 5 25 25 A
    滴度(VP/mL) 1×108~9 5×108~9 3.3×108~9 3.3×108~9 
    總病毒量 1×108~9 5×109~10 3×1010~11 3×1011~12

     

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