一、選擇性增菌培養基的介紹
在分離特定的目標菌時(shí),若樣品中存在較多的干擾菌,直接分離會(huì )比較困難,而選擇性增菌培養基的主要作用是盡可能抑制雜菌的生長(cháng),讓目標菌得到較多的增殖,逐漸稱(chēng)為優(yōu)勢群體,則可以很好的提高檢出率。
二、培養基的出廠(chǎng)檢驗
待測培養基制備:按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行配制,分裝至試管,每管10mL。
1.混合菌的接種
菌懸液制備:將質(zhì)控菌株接種至非選擇性肉湯或平板中進(jìn)行活化培養,使用生理鹽水或磷酸鹽緩沖液進(jìn)行十倍系列稀釋至適宜梯度。
接種及培養:向待測試管中接種10-100CFU的目標菌,以及1000-5000CFU的非目標菌,接種總體積為1mL,同時(shí)分別使用TSA對目標菌和非目標菌進(jìn)行接種量的計數,置于標準中規定的條件下進(jìn)行培養。
例:檢驗7.5%氯化鈉肉湯,需在試管中接種10-100CFU的金黃色葡萄球菌和1000-5000CFU的大腸埃希氏菌,可將金黃色葡萄球菌制成約10-100CFU/mL的菌懸液,大腸埃希氏菌制成約10000-50000CFU/mL的菌懸液,吸取0.9mL金黃色葡萄球菌菌液及0.1mL大腸埃希氏菌菌液至7.5%氯化鈉肉湯中,金黃色葡萄球菌菌液可直接使用TSA傾注計數接種量,大腸埃希氏菌菌液需進(jìn)行百倍稀釋后,吸取1mL菌液用TSA傾注計數接種量。將接種后的培養基置36±1℃培養18-24h。
2.非目標菌的接種
菌懸液制備:將質(zhì)控菌株接種至非選擇性肉湯或平板中進(jìn)行活化培養,使用生理鹽水或磷酸鹽緩沖液進(jìn)行十倍系列稀釋至含菌量為1000-5000CFU/mL。
接種及培養:吸取1mL制備好的菌懸液加入至待測培養基試管中,接種2支平行,置于標準中規定的條件下進(jìn)行培養。
3.混合菌培養液的接種
用10μL接種環(huán)取1環(huán)經(jīng)培養后的混合菌培養液,劃線(xiàn)接種到特定的選擇性平板上,同時(shí)每管接種一個(gè)平板。按標準方法中規定的培養時(shí)間和溫度進(jìn)行培養。
例:用10μL接種環(huán)挑取1環(huán)培養后的7.5%氯化鈉肉湯混合菌測試管的培養液,劃線(xiàn)到Baird-parker瓊脂平板上,每支試管劃1個(gè)平板,36±1℃培養24-48h
4.非目標菌培養液的接種
吸取10μL經(jīng)培養后的非目標菌培養液,涂布或傾注法接種到非選擇性平板(如TSA)上。同時(shí)每管接種一個(gè)平板,并按標準規定的培養條件培養平板。
5.結果判定
混合菌接種選擇性平板上的典型特征菌落數應>10CFU,非目標菌在非選擇性平板上菌落數應<100CFU。
解析:選擇性增菌培養基通常有較強的抑菌性,除了對非目標菌有抑制性以外,有時(shí)對目標菌的生長(cháng)也具有一定的抑制性,因此在接種10-100CFU的目標菌培養結束后,經(jīng)常會(huì )觀(guān)察不到明顯的生長(cháng)渾濁現象,因此需要通過(guò)轉接選擇性平板觀(guān)察菌落數來(lái)確定目標菌在選擇性增菌培養基中有沒(méi)有增殖。非目標菌也是如此,通過(guò)轉接計數平板上的菌落數來(lái)判斷非目標菌在選擇性增菌培養基中有無(wú)明顯的增殖。
三、培養基的驗收方法
將質(zhì)控菌株接種至非選擇性肉湯培養基中過(guò)夜培養,稀釋至10-3,也可采用其他方法制備含菌量105-107CFU/mL的菌懸液,使用1μL接種環(huán)挑取1環(huán)菌液,接種至待測培養基中,置于標準規定的條件進(jìn)行培養。
結果判定:接種目標菌的試管濁度值應達到2,接種非目標菌的試管濁度應為0或1。
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