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    致敏紅細胞



    錄入時(shí)間:2022-6-16 14:20:11 來(lái)源:現代微生物培養基和試劑手冊

    【原理】

      間接紅細胞凝集(簡(jiǎn)稱(chēng)間接血凝)試驗是以紅細胞為抗原或抗體的載體,根據抗原和抗體的特異性反應,用已知抗原測定未知抗體或用已知抗體測定未知抗原的一種微量、快速、敏感的血清學(xué)方法。

      根據致敏用抗原或抗體的不同和參加反應成分的不同,間接血凝可分為以下3種。

      (一)間接血凝試驗

      將細菌多糖質(zhì)或各種蛋白質(zhì)抗原吸附在紅細胞表面上,該紅細胞稱(chēng)為抗原致敏紅細胞,這種抗原致敏的紅細胞就具備了一種新的血清學(xué)性質(zhì),當與相應的抗血清相遇時(shí),在適宜條件下,抗原就和抗體結合起來(lái),因此紅細胞也被動(dòng)地凝集起來(lái)。

      (二)反向間接血凝試驗

      將抗體致敏在紅細胞上,以測定相應的抗原。

      (三)間接血凝抑制試驗

      這一方法多是利用抗原致敏的紅細胞來(lái)測定可溶性抗原。其基本原理是將待測的可溶性抗原液中加入已知的抗體,待反應后,再加入抗原致敏的紅細胞,由于加入的抗體和待測抗原已先行結合,所以抗原致敏紅細胞的凝集被抑制。


    【成分】

    紅細胞(綿羊)懸液
    若干ml
    戊二醛
    若干ml
    生理鹽水
    若干ml
    pH5.0醋酸緩沖液
    若干ml
    鞣酸
    若干ml
    三氯化鉻
    若干mg

    【制法】

      1.醛化紅細胞:

      (1)紅細胞:多種動(dòng)物的紅細胞均可用于間接血凝試驗。一般多用綿羊和人“O”型紅細胞。我們認為綿羊紅細胞在多方面是滿(mǎn)意的,例如綿羊紅細胞容易大量獲得,不同批次致敏的紅細胞,波動(dòng)范圍較小,血凝模式也比較穩定。

      (2)脫纖維血的制備:目前多用阿氏保存液來(lái)抗凝和保存紅細胞,方法是以無(wú)菌手續采集綿羊血或其他動(dòng)物血液,按1:3(全血:保存液)的比例置于保存液中,立即充分搖動(dòng)5~8分鐘,以防止發(fā)生凝塊,保存在4℃冰箱備用。

      (3)沉積紅細胞體積的測量:

       ①取薄層脫脂棉鋪于玻璃漏斗中。

       ②將保存液中的血液,通過(guò)上述漏斗,過(guò)濾在其他容器中以除去可能凝結的血塊,記下濾液的總量。

       ③將過(guò)濾的血液混均,取10ml置于刻度離心管中,3000rpm30分鐘,輕輕取出離心管,沉積的紅細胞呈水平液面(水平轉頭離心),讀取紅細胞高度,從總量算出壓積紅細胞的總體積。

      (4)醛化紅細胞:新鮮紅細胞經(jīng)醛類(lèi)固定以后,可大大延長(cháng)可用期。常用的醛類(lèi)有甲醛、戊二醛及丙酮醛。不同醛類(lèi)固定的紅細胞經(jīng)致敏后,血凝反應的敏感性是不同的。雙醛化的紅細胞可提高血凝反應的敏感性,F僅例舉戊二醛固定法。

      戊二醛固定法:

       ①將綿羊或人“O”型紅細胞用0.15molpH7.2磷酸鹽緩沖液洗5次。

       ②把洗過(guò)的細胞和1%戊二醛溶液預先放在冰浴中,使冷卻到6~8℃。

       ③按沉積紅細胞10ml加入1%戊二醛溶液100ml計算,在冰浴中將1%戊二醛溶液加到洗過(guò)的紅細胞中,邊加邊搖,在冰浴中醛化45分鐘。

       ④將醛化的紅細胞用生理鹽水洗5次,然后配成10%醛化紅細胞,放普通冰箱備用。

      (5)醛化紅細胞的性質(zhì):

       ①醛化后的紅細胞,鏡檢一般呈兩面凸起的圓盤(pán)狀,有的呈輕度變形。大部呈散在狀態(tài),也有的數個(gè)細胞堆在一起。

       ②醛化的紅細胞總體積有不同程度的增加,一般約増加10%~20%,體積增加的程度取決于醛化過(guò)程中紅細胞的破壞程度和洗滌時(shí)損失的多少而定。疊氮鈉可使醛化的紅細胞顏色變紅。

       ③醛化紅細胞抵抗低滲溶解和機械振蕩的能力甚強,反復凍融和在蒸餾水中皆不溶血,加溫60℃亦不被破環(huán)。凍干后重新懸浮,無(wú)明顯變化。

       ④醛化的紅細胞,不妨礙紅細胞表面化學(xué)基團對抗原或抗體的吸附。

      2.致敏方法:自Boyden (1951)用鞣酸處理紅細胞將蛋白質(zhì)抗原致敏在紅細胞上以后,又研究出來(lái)多種新的致敏方法,這些方法各有其特點(diǎn)。今將我們常用的鉻-鞣酸法介紹如下。

      鉻-鞣酸法致敏紅細胞:

      (1)取10%醛化紅細胞0.3ml置于刻度離心管中,用4ml生理鹽水洗兩次,去上清;

      (2)加2ml0.075molpH5.0醋酸緩沖液稀釋的抗體(0.05~1mg/ml),混均,再加用生理鹽水稀釋的三氯化鉻(10~20μg/ml)2ml,混均,再加生理鹽水稀釋的1:20000鞣酸2ml,混均;

      (3)于37℃水浴中致敏10分鐘,此期間混均兩次;

      (4)離心去上清,用1%NRS洗兩次;

      (5)最后加4ml1%NRS,配成0.75%致敏紅細胞備用。


    【用途】

      間接血凝技術(shù),由于具有快速、敏感和簡(jiǎn)便的優(yōu)點(diǎn),已成為廣泛應用的血清學(xué)方法之一,它不但是研究傳染病、寄生蟲(chóng)病的病原學(xué)、免疫學(xué)和流行病學(xué)的良好手段,而且亦用于血液病病因、自家免疫病、過(guò)敏性疾病以及生長(cháng)激素的研究。


    【注意事項】

      1.致敏用蛋白質(zhì)抗原或抗體的純度對血凝效果的好壞至關(guān)重要。如果抗原或抗體不純,雜蛋白可明顯地影響致敏效果,純度高、蛋白量少、效價(jià)高的抗體可獲得血凝效價(jià)高和穩定性好的抗體血球。

      2.致敏用抗原或抗體的理化性質(zhì)。蛋白質(zhì)抗原和抗體由于其本身固有的性質(zhì)不同,致敏紅細胞的效果也不同,有的經(jīng)純化后不經(jīng)任何處理,即可獲得良好的致敏效果,而另外一些蛋日質(zhì)抗原和抗體需使之發(fā)生輕度變性,才具有較好的致敏效果。

      3.用鞣酸方法致敏時(shí),鞣酸濃度須合適,一般常用的濃度對1:20000。紅細胞經(jīng)鞣酸處理后變?yōu)椴环定,而用1%正常兔血清鹽水來(lái)穩定鞣化的紅細胞,可得到較好效果。

      4.致敏的抗原或抗體濃度與血凝反應的敏感性和特異性明顯關(guān)系。合適量的致敏用抗原或抗體需先滴定。

     

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