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    隨機擴增DNA多態(tài)性分析



    錄入時(shí)間:2020-5-27 10:16:21 來(lái)源:青島海博生物

      隨機擴增DNA多態(tài)性分析(Random Amplified Polymorphic DNA, RAPD)又稱(chēng)為隨意引物PCR(Arbitrary Primed PCR, AP-PCR)是一種DNA指紋多態(tài)性分析技術(shù),其理論依據是不同的基因組中與隨意引物匹配的堿基序列的位點(diǎn)和數目可能不同,因而用一組人設計的核昔酸作為引物,通過(guò)PCR隨機擴增可產(chǎn)生物種 特異性的DNA帶譜。因此RAPD技術(shù)可用于細菌種間、亞種間乃至株間的親緣關(guān)系分析,未知菌株的快速鑒定和流行病學(xué)調查等。此外,RAPD的PCR產(chǎn)物還可作為探針,與Southern雜交技術(shù)結合,用于基因組或菌落雜交,可以填補基因組的遺傳圖譜和物理圖譜間的空缺。

      RAPD技術(shù)是1990年Williams和Welsh兩個(gè)實(shí)驗室分別建立的,Williams將通常PCR擴增中使用的特定序列引物巧妙地改為單一的僅由10個(gè)堿基的隨機序列引物;而Welsh則使用幾組通用引物,通過(guò)設置PCR擴增參數也達到了產(chǎn)生物種 特異性的DNA指紋圖。他們的研究賦予了RAPD顯著(zhù)的優(yōu)點(diǎn):在對基因組序列一無(wú)所知的前提下即可分析其DNA的多態(tài)性;方法的簡(jiǎn)單快捷和高度重復性可普及應用。

     

    (一)方法一

     

      1.細菌基因組DNA制備

     

      以葡萄球菌(Staphylococcus)為例。菌株在2~5 ml的心腦浸液培養基中培養過(guò)夜,收集細胞并溶于0.2 ml的TE緩沖液;加入0.2 mg/ml的金葡溶菌酶,在37t保溫lh;加入0.2 ml蛋白酶K溶液(0.5mg/ml蛋白酶K,1% SOS,200 m mol/L EDTA,1 mmol/L CaCl2),50℃保溫lh;澄清的上清用酚、氯仿抽提后用乙醇沉淀DNA;將DNA溶于TE中,并在瓊脂糖凝膠上電泳測定終濃度。

     

      2.PCR擴增引物

      

      引物I: Kpn-R: CCAAGTCGACATGGCACARTGTATACATAYGTAAC

      引物II: pBs: GGA.GGAAACAGCfATGACCATGA

     

      3.AP-PCR

     

      初級反應體系10μl: 0.025UTaqDNA聚合酶,Taq緩沖液(strata-gene)含4 mmol/LMgCh, 0.2 mmol/L各個(gè)dNTP,10 μ mol/LKpn-R引物或PBS引物,和DNA模板(濃度:30 pg-7.5 ng)。首先進(jìn)行兩個(gè)低強度PCR循環(huán):94℃, 5min; 40℃, 5 min; 72℃,5 min; 10高強度PCR循環(huán):94℃,1 min; 60℃,1 min; 72℃,2 min;加入二級反應體系:2.25UTaq, Taq緩沖液,0.2 mmol/L各個(gè)dNTP和50μ Ciα- [32P] dCTP,繼續進(jìn)行20-30個(gè)高強度PCR循環(huán)。

     

      4.聚丙烯酰氨凝膠電泳分離AP-PCR產(chǎn)物和放射自顯影

     

      PCR產(chǎn)物在5%的聚丙烯酰氨凝膠上電泳分離,1kb的標準分子量DNA作為對照,TBE作為電泳緩沖液。用Kodak XAR-5膠片進(jìn)行放射自顯影。

     

    (二)方法二

     

      1.DNA的純化

      

      同上

     

      2.引物設計

     

      引物設計遵照如下原則:①長(cháng)度為9~10核甘酸;②G+C mol%范圍50- 80,③無(wú)回文結構。如:隨機引物0995: 5'CCGAGTCCA3';或隨機引物5'TGGTCAC'TGA3'。

     

      3.PCR擴增

     

      25 μl的反應體系:10 mmol/LTris-HCI (pHS.3); 50 mmol/LKCI;2mmol/LMgCl2; 0.01%明膠;100 μmol/L dATP, dCTP, dGTP, dTIP; 0.2μmol/L引物;25ng基因組DNA; 0.5UTaq聚合酶。

        94℃, 1 min; 36℃, 1 min; 72℃, 2 min。

     

      4.PCR產(chǎn)物

     

      在1.4%瓊脂糖凝膠上電泳分離。

     

    (三)影響AP-PCR的因素

     

      (1) PCR的退火溫度可能影響AP PCR帶譜的特異性和重復性,但其影響程度取決于引物的長(cháng)度,引物長(cháng)時(shí)影響不大可使用高退火溫度;引物短時(shí)影響大因而退火溫度要低 以保證引物與模板的結合。

      (2)模板濃度:DNA的模板濃度以30pg-7.5ng為適宜,lOpg是低限。

      (3)引物選擇:AP-PCR的引物不需特異選擇,尤其當用于種的鑒定時(shí)。但不同序列的引物擴增的PCR多態(tài)性不同,尤其是種或株特異性的DNA片段。

      本文節選自《常見(jiàn)細菌系統鑒定手冊》第十五章。

     

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